三氟乙酸盐的化学位移会发生改变吗
牵牛花酸性条件开红花、自来水一般不建议用淘米水直接浇花三氟乙酸会改变单糖结构一般来说。碱性水只可用于浇灌碱性植物,原因是碱性的,便可以浇花了、雪水、泉水。例如、凉开水 碱性水包括,以酸性水好一些:盐水,可浇灌大多数花卉:雨水。 但是这也不一定,大多数植物喜欢酸性土壤、池塘水,是没问题的,少部分植物喜欢碱性土壤、河水,经过一段时间放置细菌发酵后。 酸性水包括,碱性条件就开蓝紫花,可见酸性不严重的话,变为酸性、磁化水
1.3,3,3-三氟丙烯经高锰酸钾氧化得到。
2.乙酸(或乙酰氯与乙酸酐)与氢氟酸、氟化钠等发生电化学氟化,然后水解得到。
3.1,1,1-三氟-2,3,3-三氯丙烯被高锰酸钾氧化得到。此原料可通过六氯丙烯的Swarts氟化制取。
4.以2,3-二氯六氟-2-丁烯氧化制取。
5.由三氯乙腈与氟化氢反应生成三氟乙腈,进而水解得到。
6.由三氟甲苯经氧化而得。
7.以2,3-二氯六氟-2-丁烯氧化制取;
8.以氟为催化剂对2,3-二氯六氟-2-丁烯进行氧化以制取之;
9.由3,3,3-三氟丙烯经高锰酸钾氧化、或由三氯乙腈与氟化氢反应生成三氟乙腈继而水解、或将乙酸(或乙酸酐)进行电化学氟化,都可制得三氟乙酸。
将1~2mg试样与200mg纯KBr研细均匀,置于模具中,用(5~10)x107Pa压力在油压机上压成透明薄片,即可用语测定。试样和KBr都应经干燥处理,研磨到粒度小于2微米,以免散射光影响。
(2)石蜡糊法
将干燥处理后的试样研细,与液体石蜡或全氟代烃混合,调成糊状,夹在盐片中测定。
(3)薄膜法
主要用于高分子化合物的测定。可将它们直接加热熔融制或压制成膜。也可将试样溶解在低沸点的易挥发溶剂中,涂在盐片上,待溶剂挥发后成膜测定。
关键:TFA、甲醇的浓度、体积,蒸发次数当多糖含有糖醛酸时,由于中性糖和酸性糖对酸水解的耐受不同,与糖醛酸连接的单糖很难被酸水解。糖醛酸的定量可使用比色分析法或寻找需要其他的分析方法如GC-MS。含糖醛酸的多糖用氘代硼化钠还原后,再进行酸水解、衍生化,经GC-MS可以很好地定性糖醛酸类型。测定衍生GC方法1:(山药多糖的 GC-MS 分析)乙酰化衍生物:(1)取水解的单糖 3mg(2)加入 1mL 的吡啶,1mL 的乙酸酐,加热两个小时。(3)后减压抽干(4)加入氯仿,溶解用蒸馏水洗涤,分三次萃取,取氯仿层,加压抽干,得棕黄色产物,(5)此乙酰化的单糖醇用氯仿稀释后进行 GC-MS 分析。GC-MS 操作条件:DB-5MS 柱(30m×0.25mm×0.25µm)柱温采用程序升温开始温度为 120℃,以 10℃/min 速率升温至 170℃;再以 15℃/min 升温至 280℃;最后在 280℃维持 40 分钟。MS 条件:M/Z:50~550,电子流量 70ev,EI源。[1]姜军. 山药多糖的分离纯化及其化学结构的初步研究[D].扬州大学,2007.方法2:(亚麻籽壳多糖的提取)(1)加入10 mg盐酸羟胺0.5 mL吡啶,摇匀于90 °C条件下水浴反应30 min(2)加入1.O mL乙酸酐,90 °C水浴30 mm进行乙酰化反应(3)氮吹去除溶剂,加入1.0 mL肌醇六乙酸醋内标溶液,进行GC分析。标准单糖的衍生化分别称取鼠李糖、木糖、岩藻糖、半乳糖、甘露糖、阿拉伯糖和葡萄糖标准品10 mg,加入10 mg盐酸羟胺,1 mL吡啶摇匀,90 °C水浴30 min,加1 mL乙酸酐,90°C水浴30 min进行乙酰化,氮气吹干溶剂,加入1 mL肌醇六乙酸酯内标溶液,进行GC分析。气相色谱分析条件HP 7890, FED 检测器,色谱柱为 HP-INNOWAX 柱(30 mxO.25 mmxO.25 um),恒流模式,流速为2 mL/min,程序升温条件为:180 °C保持1 min,从180 °C开始以5 °C/min升温至210 ℃,保持lOmin,再以1 °C/min升温至230℃,保持5 min。进样口采用分流模式,分流比为10:1,进样口温度为270 ℃。检测器温度为270℃,检测器H2流速为30 mL/min,空气流速为300 mL/min,尾吹为25 mL/min。进样量为1 uL。
[1]毛丰玮. 亚麻籽壳多糖的提取、分离纯化与结构研究[D].浙江工商大学,2013.方法3:甲基化-气相色谱质谱联用分析(1)羧基还原10 mg多糖溶于7 mL水中,加入CMC 330 mg,磁力搅拌下滴加0.01 mol/L HCl,使pH保持为4.75,维持2h。逐滴滴加2mol/LNaBD4溶液(10mL),此时pH值急剧上升,需用4 mol/LHCL控制pH为7.00,持续搅拌,NaBD4溶液在45 min内加完,在室温下继续反应Ih。反应完毕后,滴加冰乙酸至pH4.0以消耗多余的NaBD4,反应液蒸溜水透析24 h,流水透析24 h,透析袋内液浓缩后,冷冻干燥。(2)甲基化反应(1)无水二甲基亚砜的制备二甲基亚砜中加入4A分子筛,置于干燥皿中保存。(2)NaOH干燥粉末的制备在取适量的块状NaOH,置于红外灯下碾磨至粉状,现磨现用。(3)甲基化反应瓶先通入干燥氮气15 min左右驱赶瓶中空气,在氮气流中快速加入P2O5千燥后的羧基还原多糖和5 ml无水二甲亚砜(DMSO,以4 A分子筛脱水),磁力搅拌至糖样充分溶解后再搅拌1h。迅速加入碾磨好的NaOH干燥粉末,盖上瓶盖,反应2h。将反应瓶置于冰水浴中,用注射器加入碘甲烷1 mL,继续反应2 h,整个反应过程在氮气压下进行,尽量保证反应在无水无氧条件下进行。将反应后溶液加入等体积氯仿,充分振荡,萃取甲基化多糖,重复至少三次,合并萃取液。再用蒸德水反复洗萃取液至少三次,减压浓缩后于P205千燥瓶中千燥。以红外光谱3600-3300 cm"'处有无轻基吸收峰作为判别甲基化是否完全的标准。(3)甲基化多糖水解、还原和乙酰化甲基化多糖需要先以甲酸水解再用三氟乙酸水解。加入90%甲酸1 mL于装有样品的安瓿管中,充氮封管,在100°C下水解6h,水解完毕后,以氮吹除去甲酸,加入甲醇1ml,氮吹去除,以完全去除甲酸,加甲醇重复三次。加入NaBD4 70 mg还原24h,室温磁力搅拌,除去NaBD4,再加入lmL2mol/L三氟乙酸,充氮封管,在120 °C下水解3h。水解完毕后,以氮吹完全除去三氟乙酸,加入甲醇1ml,氮吹去除,以完全去除甲酸,加甲醇重复三次。
甲基化单糖经乙丑化,水解后,用气相色谱-质谱分析。(4)气相色谱一质谱分析仪器型号:TRACE GC ULTRA DSQ II(thermo)色谱柱:TR-35MS (30 mxO.25mmxO.25 um):恒流流速(高纯氦气):1.0 mL/min,柱温程序升温:80度保留3 min,以15 °C/min升至200 °C保留1 min,再以10 °C/min升至260。C ,保留5 min。接口温度 250℃, EI+源:70 eV,250 °C ,扫描频率 5 次/s,质量范围:33-500 amu。[1]毛丰玮. 亚麻籽壳多糖的提取、分离纯化与结构研究[D].浙江工商大学,2013.方法4:(党参果聚糖)高碘酸钠氧化10 mg 样品溶于 10 mL 0.015mol·L-1高碘酸钠中, 避光置于 4 ℃处 ,间隔不同时间取样稀释250 倍后用分光光度法测定高碘酸钠的消耗量及用 0.005 mol·L-1NaOH 滴定甲酸的释放量。上述氧化完全的多糖溶液加入 0.2 mL 乙二醇 ,充分混合后对蒸馏水进行透析 24 h, 用 8 mg NaBH4于室温还原12 h,用 0.1 mol·L-1醋酸调至 pH 4~ 5,再对水透析 24 h, 减压抽干, 用 1 mol·L-1三氟醋酸封管 100 ℃水解 12 h ,减压抽干 ,乙酰化后进行气相色谱 。[1]叶冠,李晨,黄成钢,李志孝,王新亮,陈耀祖. 党参果聚糖的化学结构[J]. 中国中药杂志,2005,17:1338-1340.HPLC方法1:(阿魏侧耳子实体多糖)高效液相色谱:色谱条件为:色谱柱为 Shodex KS804 Sugar(300mm ×7.8mm), 柱温 40 度流动相为水, 流速0.8mL·min-1。 检测用 410R Ⅰ 示差检测 器, 数 据处理用810GPC 软件进行。 同时用鼠李糖、阿拉伯糖、甘露糖、半乳糖、木糖、果糖、葡萄糖、岩藻糖 8 种单糖进行对照, 根据峰值确定样品的单糖组成。
[1]李军. 阿魏侧耳子实体多糖分离纯化及其化学结构的初步研究[D].华中农业大学,2004.方法2:(白术多糖)分子量及纯度检测根据文献和中华人民共和国药典2000版附录的方法,分别将分离组分和各种标准多糖用重蒸馏水配制成溶液,用HPLC-ELSD进行检测。色谱条件:色谱柱为ShodexKS 804 Sugar (300 mm x 7.8 mm),柱温40℃流动相为水,流速0.8 ml/min。检测条件:飘移管温度为120度,气流速度3.4 L/min,灵敏度为26。单糖组成的测定色谱条件:色谱柱为Kromasil NH2 ( 250 mm x 4 . 6 mm , 5 u ) ,柱温30度流动相为乙腈一水(72:28),流速:0.8 ml/min。检测器条件:飘移管温度为110度气流速度1.9 L/min灵敏度为26。[1]池玉梅,李伟,文红梅,崔小兵,蔡皓,毕肖林. 白术多糖的分离纯化和化学结构研究[J]. 中药材,2001,09:647-648.
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三氟乙酸水解
水解
方法1(毛头鬼伞菌丝体粗提物的制备)
(1)取2mg多糖样品放入薄壁长试管中,加入2mol/L三氟乙酸(TFA)4mL,在110℃下水解
(2)多糖样品水解2h后,取试管内溶液减压蒸干(低于40℃)
(3)然后加入3mL甲醇蒸干,重复以上操作4一5次,以完全除去TFA。
(4)用超纯水溶解定容至100mL容量瓶,稀释100倍后上样测定。
[1]凡军民. 毛头鬼伞菌丝体多糖的分离、纯化和化学结构鉴定及生物活性研究[D].南京农业大学,2006.
(1) 土壤和松散沉积物试样
试样包装应避免污染。可以用干净的布袋、玻璃器具等,切忌用塑料袋包装。
试样量要根据待测项目和试样中目标有机质的含量确定。一般情况下,应保证脱水后的质量在50~200g。
(2)烃源岩分析试样
采野外剖面试样要去掉风化层,要洗去泥沙,尽量选取新鲜岩样钻井岩心试样要洗掉泥浆,岩屑试样要有层位代表性。
试样包装应避免污染。可以用干净的纸、布、玻璃器具等,切忌用塑料袋包装。
试样量要根据待测项目和试样中目标有机质的含量确定。一般情况下,常规地球化学分析项目需50~200g。
(3)原油试样
试样要具有层位代表性或区域代表性。
试样的包装要避免污染,最好用玻璃器具包装,用于地球化学项目测试的试样切忌用塑料器具包装。由于原油都具有不同程度的流动性和挥发性,包装物应具有良好的密封性和一定的耐压能力。在条件允许的情况下,应尽量在进行脱水和脱砂处理后包装。
试样量要根据待测项目确定。对于常规地球化学分析,约需0.5~2.0g对于物性分析,试样量需求较大,一般需要50~200g。
(4)油田水分析试样
试样要具有层位代表性或区域代表性。必须使用符合要求的取样器具,按照有关操作规程取样。
试样的包装要避免污染,最好用玻璃器具包装。由于油田水中往往含有不同程度的挥发性烃类物质和硫化氢等腐蚀性物质,包装物不仅应具有良好的密封性,还需要具有一定的耐压能力和抗腐蚀能力。
试样量要根据待测项目和目标物的含量确定,一般不少于1000mL。
(5)气体分析试样
试样要具有层位代表性或区域代表性。必须使用符合要求的取样器具,按照有关操作规程取样。
气体试样的包装要求很高。由于油田天然气中往往含有不同程度的硫化氢等腐蚀性物质,包装物不仅应具有良好的密封性和耐压能力,还需要具有一定的抗腐蚀能力。同时,还要避免污染。用于轻烃(C1~C7)分析的岩屑、土壤、松散沉积物试样可采用密封器具包装低压气样可用倒置玻璃瓶包装,并用饱和食盐水密封高压气样应用高压钢瓶包装。
试样量要根据待测项目和目标物的含量确定,对于气体试样,在常温常压下应不少于250mL。
(6)微体古生物分析试样
野外剖面样品要去掉风化层,采集新鲜岩样钻井岩心样品要洗掉泥浆,岩屑样品要有层位代表性。
用纸袋或塑料袋包装,必要时可用棉花等软物包好后再用纸袋包装。
根据待鉴定的微体古生物门类的不同,所需试样量也有所差异,一般情况下需要100~200g。
(7)岩石矿物及岩石物性分析试样
储、盖层样品的采集密度可根据时代、层位以及分析目的不同,以及有关分析项目的要求而定。
用于单井储层评价的试样要兼顾砂岩、碳酸盐岩及泥岩3部分,并根据测试项目的要求、岩石岩性的变化情况、非均质程度、所代表的深度,采集有代表性的岩心并妥善保存。
(8)油气饱和度分析试样
应用铝箔纸或塑料纸包装蜡封保存。其他一般试样装试样袋(布袋或纸袋)保存。
(9)试样的管理与保存
所有进入实验室的试样应按顺序统一编号。
原则上所有的试样都应在5℃以下温度下保存,并避免强光照射。根据分析项目要求,不同性质试样还应遵循相关的储存时间限制。72.1.2 分析测试结果
(1)分析测试时间
油、气、水试样分析测试应在自收到试样之日起5~7d内完成,若遇稠油等特殊试样,可适当延长5~7d。
油气化探试样的分析测试应在30d内完成。
烃源岩地球化学分析测试项目可在30~45d内完成。干酪根分析、岩石矿物和物性分析项目的完成时间可适当延长。
(2)分析测试成果报告
应根据不同分析项目的具体要求,提交符合各项质量要求的分析测试成果报告,其中应包括最终的定性和(或)定量分析结果,以及必要的原始数据、图谱和照片等。
所有的分析测试完成后,都应保留有至少可供两次分析测试的原始试样量,并将完整的原始数据记录保留一年以上,备复查之需。
检查纯度最常用的判断方法:
(1)用gc、hpLc测定组成多糖的单糖的摩尔比是否恒定。
用不同的柱型测定结果更为可靠。
(2)电泳只出现一条带。
如可用聚丙烯酰胺凝胶电泳、乙酸纤维素薄膜电泳及玻璃纤维纸电泳。对于中性多糖可采用高压电泳,以硼酸盐为缓冲液,可增大其迁移速度。
(3)凝胶柱层析图呈现对称的单峰。若有“拖尾”现象,说明其均一性不够好。阴离子交换层析纯化
用DeAe一纤维素52(2.6x100cm)柱层析,0.lmol/Lnacl洗脱,流速6ml/h,按2ml一管分部收集,苯酚一硫酸法逐管检测,绘制收集体积与糖含量之间的关系曲线。看是否有单一对称峰。
按照Ye等报道,采用DeAe一52一纤维素交换柱层析法(2.6x30cm)对鲍氏层孔菌菌丝体粗多糖进行初步分离。DeAe一纤维素凝胶预处理:称取DeAe一52一纤维素凝胶干粉,加入约10倍体积质量比(ml/g)的0.5mol/Lna0h溶液浸泡30分钟,倒出上清液,用大量去离子水反复浸洗至ph值近中性再用相同体积的0.5mol/LhcI溶液浸泡30分钟,倒出上清液,用大量去离子水反复浸洗至ph值近中性最后用相同体积的0.5mol/lnaoh溶液再浸泡30分钟,用大量去离子水反复浸洗至ph值中性。处理完毕后,进行湿法装柱,用去离子水0.5mol/Lnacl溶液,去离子水依次分别平衡(流速1.0ml/min)2一3个柱体积备用.
糖样100mg溶于5ml的去离子水中,离心除去不溶物,上样于DeAe一52一纤维素阴离子
-1层析柱(2.6x30cm,cl型),分别采用去离子水0.1和0.3mol/LnacI溶液进行分段梯度洗脱,
流速1.0ml/min,自动收集器分部收集(10ml/管),每梯度20管。用硫酸一苯酚法跟踪检测各管多糖含量(490nm处吸收值),以收集的管数为横坐标。吸光值(490nm)为纵坐标绘制DeAe一52一纤维素色谱柱洗脱曲线。依据洗脱峰型,合并相同组分,50℃旋转蒸发浓缩,对去离子水透析48h以去除nacI及小分子杂质,最后将透析内液冷冻干燥,得初步纯化产品。
初步纯化多糖得率计算公式:
多糖得率(%)=纯化多糖质量/粗多糖质量x100%
葡聚糖凝胶层析纯化
采用sephadexg-100凝胶层析法对DeAe-52一纤维素初步纯化的不同组分的多糖样品进一步纯化。葡聚糖凝胶(sephadexg一100)的预处理:称取sephadexg一100凝胶干粉,加入30倍体积质量比(ml/g)的去离子水,沸水浴5小时使其溶胀。冷却后用去离子水反复浸洗,减压脱气后进行湿法装柱,用0.1mna2so4溶液平衡(流速0.25ml/min)2一3个柱体积备用。
分别称取经DeAe一纤维素一52初步纯化的各多糖组分样品20mg,溶于2ml0.1mna2so4溶液中,上样于sephadexg一100层析柱(2.6x60cm)用0.1mna2so4溶液溶液洗脱,流速0.25ml/min,分步收集(5ml/管)。
用硫酸一苯酚法跟踪检测各管多糖含量(490nm处吸收值),以收集的管数为横坐标。吸光值(490nm)为纵坐标绘制sephadexg一100色谱柱洗脱曲线。依据洗脱峰型,合并相同组分,50℃旋转蒸发浓缩,对去离子水透析48h以去除na2so4及小分子杂质,最后将透析内液冷冻干燥,得不同纯化产品。
纯化多糖得率计算公式:
纯化多糖得率(%)=纯化多糖质量/粗多糖质量x100%
(鲍氏层孔菌菌丝体粗多糖)
(4)纸层析法呈单一集中斑点。
取0.5%的多糖样品溶液50ul,点样于新华中速滤纸(3cmx20cm)距端点1cm处的中部,以正丁醇:浓氨水:水(4o:50:5)为展开剂,饱和2小时以上,在室温下展开6h,取出吹干,用0.5%甲苯胺蓝液染色,立即用95%乙醇漂洗至背景褪色,看是否只有一个清晰的斑点。
(5)琼脂糖(Agarose)凝胶电泳法
在琼脂糖板(厚度为0.2cm)上点样3一5ul采用浓度为0.075mol/L,ph8.6的巴比妥缓冲液,电泳1-1.5h,电压为64一80V,甲苯胺蓝(浓度为1%)染色,醋酸乙醇混合溶液(醋酸:乙醇:水=0.1:5:5)脱色。多糖纯品经电泳展开后,看是否呈现单一斑点,斑点是否清晰。
(6)紫外分光光度法
将多糖pwZ加0.9%nacI溶液溶解,配成浓度为1mg/ml的溶液,采用uV一16oA紫外可见光谱仪扫描(200nm一30onm)观察260nm、280nm处是否有吸收峰。
多糖的分子量测定:
过去用超速离心沉降法、光散射法、渗透压法、粘度法(:多糖质谱鉴定)等,这些方法操作复杂且误差较大,现已少用。现在较常用的方法有凝胶过滤法和高效凝胶液相色谱法,这两种方法须先用已知分子量的标准多糖对照测定样品的分子量。
一般来说,多糖结构分析包括以下几点:
(1)单糖组成分析:研究确定单糖的种类及摩尔比;
完全酸水解后用高效液相色谱方法(hpLc)或气相色谱方法测定。
(2)糖苷键类型:研究确定糖苷键及支链点连接位置;
甲基化分析方法
高碘酸氧化法与smith降解法
(3)糖环大小:研究确定糖苷键为呋喃糖或吡喃糖;
红外光谱
(4)异头碳构型:研究确定糖苷残基的a-或p-构型;
2DnmR.(TwodimensionalnuclearmagneticResonance)光谱分析方法测
(5)确定单糖残基和重复单元的序列
甲基化分析方法与磁共振光谱分析方法结合分析,一般会参考多糖的单糖组成及摩尔比信息以利于解析多糖结构。
高碘酸氧化法
薄层层析(TLc)——定性,
气相色谱法
(6)取代基团位点:研究0h-修饰基团的种类和取代位点,如0-磷酸化,乙丑基取代,0-
硫酷化等;
比色分析方法
(7)多糖分子量分布的研究。
紫外光谱
定性与定量方法
薄层层析:残基定性
气相色谱:残基定量
气质联用:残基定量
高效阴离子色谱法:残基定量
鉴定结构常用物理化学方法:
高效液相色谱:确定单糖组分和相对分子量
红外光谱分析:测定多糖的官能团,不仅可以检测酮糖、酵糖的耻喃糖环或呋喃糖环的构象和糖苷键的构型
核磁共振:α-构型与β-构型残基的比例;判断异头碳构型;推断主链和支链连接键型鉴定结构复合方法:
甲基化分析:推断出多糖样品中糖基的连接方式及各种连接键型的比例
高碘酸氧化法与smith降解法:判断糖苷键的位置、直链多糖的聚合度及支链多糖的分支数目
糖睛乙酸酷衍生物的气相色谱法:单糖组成和摩尔比
各种多糖化学结构鉴定方法的具体实施方案
1、酸水解
(1)完全酸水解
-1称取20mg样品,加入2mL2mol·L的h2so4于安培管中沸水浴水解8h,水解液用
baco3中和至ph=7,离心,取上清夜置冰箱冷藏备测。(阿魏侧耳子实体多糖分离纯化及其化学结构的初步研究)
(2)部分酸水解
称取糖样70mg,80℃条件下,0.05m三氟乙酸水解2h。降至室温后,离心(4000r/min,10min),将沉淀干燥,留做gc分析。上清用无水乙醇除酸至中性(ph为6~7),蒸馏水透析48h:将袋外透析液浓缩,真空干燥,留做gc分析;袋内液浓缩至5ml左右,加10倍体积无水乙醇,醇沉过夜,离心(4000r/min,10min),沉淀常规干燥,作gc分析;上清浓缩,真空干燥,留做gc分析。
2、高效液相色谱
确定样品的单糖组成
色谱条件为:
色谱柱为shodexKs804sugar(300mm×7.8mm)
柱温40度
流动相为水
-1流速0.8mL·min
检测用410RⅠ示差检测器,数据处理用810gpc软件进行。
同时用鼠李糖、阿拉伯糖、甘露糖、半乳糖、木糖、果糖、葡萄糖、岩藻糖8种单糖进
行对照,根据峰值确定样品的单糖组成。
分子量的测定以标准分子量的葡聚糖pulluan作分子量测定标准。让其通过高压液相色谱柱,条件同上,先以分子量对数与对应的保留时间作标准曲线,从标准葡聚糖pulluan的工作曲线上可以求得该成分分子量。
例如:(阿魏侧耳子实体多糖分离纯化及其化学结构的初步研究)
将水解后的多糖样品pw2进行hpLc分析,结果如表所示:阿魏侧耳子实体多糖pw2经过酸水解后,得到2种单糖:葡萄糖和半乳糖,摩尔比例1.77∶1。
例如:
4经hpLc测定后对照标准曲线得多糖pw2的分子量为3.18×10。(阿魏侧耳子实体多糖
分离纯化及其化学结构的初步研究)
4、甲基化分析
(1)基本原理
先将多糖中各种单糖残基中的游离羟基全部甲基化,然后将多糖中的糖苷键进行完全酸水解,水解后得到的化合物,其羟基所在的位置,即为原来单糖残基的连接点。同时根据不同甲基化单糖的比例,可以推测出此种连接键型在多糖重复结构中所占的比例。
用此种方法得到的羟基及nabh4还原醛基后产生的羟基,经乙酰化可得到甲基化的糖醇乙酸酯(此产物易挥发,可进行gc分析),再经gc与gc-ms分析,通过气相色谱的出峰顺序和对质谱谱图的主要离子碎片的分析便可以较准确地确定糖的连接键型。
反应通式如下
:
(2)甲基化反应
取充分干燥的多糖样品10mg,溶解在2.0ml的二甲基亚矾(Dmso)中。在n2保护下快速加入干燥的naoh粉50mg,用n2排出空气,加盖密封,室温反应1.0h并间歇振荡。在n2保护下缓慢滴加碘甲烷1.0ml,用n2排出空气,加盖密封,室温继续反应1.0h并间歇振荡,反应完成后加0.5ml水终止反应。反应液先用自来水流水透析48h,再用蒸馏水透析24h,透析液冷冻干燥得第一次甲基化样品。第一次甲基化样品继续甲基化,反应步骤同上,得第二次甲基化样品。如此重复甲基化三次。甲基化后的样品用红外光谱检测,3700
cm-1—3100cm-1,附近无羟基的特征吸收峰,表明甲基化反应完全。
(3)甲基化样品的衍生化
上述完全甲基化多糖样品加入2mol/1的三氟乙酸(TFA)3.0ml,120℃密闭水解2.0h。冷却后50℃减压蒸发干,加2.0ml甲醇再蒸发干,重复三次,最后蒸发干得完全甲基化多糖的水解产物。加蒸馏水2.0ml使其溶解,再加硼氢化钠25mg,振荡后室温还原反应2.0h。反应完后滴加0.1mol/1醋酸分解过量的硼氢化钠并调ph值至5.5~7.0弱酸性。反应液50℃减压蒸发蒸干,加2.0ml甲醇再蒸干,重复三次,最后蒸发干。
上述蒸发干样品加入1.0ml醋酸酐和1.0ml吡啶,封管后在沸水浴中反应1.0h。反应液50℃减压蒸发干,加2.0ml甲醇再蒸发干,重复三次,最后蒸发干。加入丙酮1.0ml,用0.45ul尼龙微孔滤膜过滤,取样进行gc/ms分析。
(4)衍生化样品的gc/ms分析
多糖样品经甲基化、水解、还原、乙酰化后得到甲基化糖醇乙酸酯,进行gc/ms联机分析,根据文献的相对保留时间和不同单糖的主要离子碎片(m/e),推断出多糖样品中糖基的连接方式及各种连接键型的比例。
本实验采用的条件为:gc(Variancp3800型)和ms(Variansatum2200型)气相一质谱联用仪,Db-5ms石英毛细管柱(30mx0.25mmx0.25um)程序升温,初温80℃,保持1min,以8℃/min升至210℃,保持1min,再以20℃/min升至260℃,保持1min氦气作载气,进样口温度250℃,分流比1:50,柱流速1.0ml/min电子电离源(eI源)70eV,倍增器电压350V,灯丝电流250uA,接口温度260℃,离子源温度180℃,质荷比(m/z)扫描范围30~450,扫描速率2.5scan/sec。(胞式层孔菌菌丝体多糖分离纯化、结构鉴定及其生物活性研究)
流程图如下:(mAep-2a-2b是安络小皮伞菌丝体多糖的某个过程中第某个样品)
篇二:1多糖含量检测
亿信检测推出单糖组成方案
简介:gc-ms(气相质谱联用技术测定单糖组成)
1多糖含量检测
方法:苯酚-硫酸法是利用多糖在硫酸的作用下先水解成单糖,并迅速脱水生