刚买的苯酚是固体的 怎么配试剂啊

配制方法：质量分数p=0.2% 的苯酚溶液

【1】确定配制体积为500ml时，在500ml烧杯中称量苯酚1.0g，加蒸馏水499ml，溶解混合均匀即可。

【2】然后转移到500ml 棕色试剂瓶中，贴标签。

苯酚100g，铝片0.1g，碳酸氢钠0.05g，加热蒸馏，收集182℃蒸馏液，然后称取5g，定容100mL。

苯酚的沸点是182度。用一般的蒸馏装置就可以，水冷凝。收集蒸馏液，如果是苯酚是液体，那用烧杯直接称取液体5g，加水，然后倒入100ml容量瓶，用水洗涤烧杯，补满就行了

（1）将较大量的苯酚溶在水中,得到苯酚悬浊液,过滤得苯酚溶液.这种方案纯度较高.

（2）将较大量的苯酚溶在热水中,冷却至室温,得到苯酚悬浊液,过滤得苯酚溶液.这种方案速度较快且更能保证饱和但是因加热的过程在空气中进行,易加快苯酚氧化速度而使制得的苯酚溶液中混有较大量的苯醌等氧化产物.

1. 使用原料：大多数市售液化苯酚是清亮无色的，无需重蒸馏便可用于分子生物学实验。但有些液化苯酚呈粉红色或黄色，应避免使用。同时也应避免使用结晶苯酚，结晶苯酚必须在160℃对其进行重蒸馏除去诸如醌等氧化产物，这些氧化产物可引起磷酸二酯键的断裂或导致RNA和DNA的交联等。因此，苯酚的质量对DNA、RNA的提取极为重要，我们推荐使用高质量的苯酚进行分子生物学实验。

2. 操作注意：苯酚腐蚀性极强，并可引起严重灼伤，操作时应戴手套及防护镜等。所有操作均应在通风橱中进行，与苯酚接触过的皮肤部位应用大量水清洗，并用肥皂和水洗涤，忌用乙醇。

3. 苯酚平衡：因为在酸性pH条件下DNA分配于有机相，因此使用苯酚前必须对苯酚进行平衡使其pH值达到7.8以上，苯酚平衡操作方法如下：

① 液化苯酚应贮存于-20℃，此时的苯酚呈现结晶状态。从冰柜中取出的苯酚首先在室温下放置使其达到室温，然后在68℃水浴中使苯酚充分溶解。

② 加入羟基喹啉（8-Quinolinol）至终浓度0.1％。该化合物是一种还原剂、RNA酶的不完全抑制剂及金属离子的弱螯合剂，同时因其呈黄色。有助于方便识别有机相。

③ 加入等体积的1M Tris-HCl（pH8.0），使用磁力搅拌器搅拌15分钟，静置使其充分分层后，除去上层水相。

④ 重复操作步骤③。

⑤ 加入等体积的0.1M Tris-HCl（pH8.0），使用磁力搅拌器搅拌15分钟，静置使其充分分层后，除去上层水相。

⑥ 重复操作步骤⑤，稍微残留部分上层水相。

⑦ 使用pH试纸确认有机相的pH值大于7.8。

⑧ 将苯酚置于棕色玻璃瓶中4℃避光保存。

再配置6%苯酚：取75ul的80%苯酚于烧杯中，加入960ul水（每次测定均需现配），测定的时候就用6%的苯酚来测！

希望帮到你！

一般单糖，蛋白质，色素等都会有影响，所以测定之前要把这些干扰都除去。

在不同文献里发现不同的苯酚溶液配置方法，有的直接配制，有的要添加Al片、NaHCO3或氢氧化钠后蒸馏。你是用来测多糖总量的吧，再加上如果用分光光度法仪器的误差,那我想你的苯酚是分析纯的话应该可以直接配制,且注意温度控制（苯酚室温下为固态）。如果精度要求高还是用色谱方面的相关技术，而且苯酚要重蒸馏。怎么配取决于你对实验结果的要求（如精度要求，多糖成分是常量还是微量甚至痕量）。

这是我参照文献和结合自己实验工作做出的回答，本人才疏学浅，能力只能至此。

本身性质：碱

PH范围6.6～8.0

颜色黄～红

溶液的配制方法：取0.1

g苯酚红与5.7

mL

0.05

mol/L的NaOH溶液在研钵中研匀后用纯水溶解制成250

mL试液。

10

mL待测液需用滴数：1

需要说明的是5％的苯酚溶液.他里面的溶剂不一定就是指水,只不过水是我们日常最常用的溶剂而已!

望采纳，谢谢

0.5%硼砂水溶液，也就是称取0.5g的硼砂到100ml的水中溶解好；4:1也就是说苯酚跟0.5%硼砂水溶液按4:1混合，例如你要配个500ml，那你就量取400ml的苯酚与100ml的0,5%硼砂水溶液混合就ok了。