测定土壤酶，在选择抑菌剂时，有什么可以代替甲苯吗

脲酶urease（水解酶）：

脲酶试验原理：

存在于大多数细菌、真菌和高等植物里。它是一种酰胺酶、能酶促有机物质分子中酶键的水解。脲酶的作用是极为专性的，它仅能水解尿素，水解的最终产物是氨和碳酸。土壤脲酶活性，与土壤的微生物数量、有机物质含量、全氮和速效磷含量呈正相关。根际土壤脲酶活性较高，中性土壤脲酶活性大于碱性土壤。人们常用土壤脲酶活性表征土壤的氮素状况。

土壤中脲酶活性的测定是以脲素为基质经酶促反应后测定生成的氨量，也可以通过测定未水解的尿素量来求得。本方法是测定生成的氨量。

试剂：

1）甲苯

2）10%尿素：称取10g尿素，用水溶至100ml。

3）柠檬酸盐缓冲液（PH6.7）：184克柠檬酸和147.5克氢氧化钾溶于蒸馏水。将两溶液合并，用1mol/LNaOH将PH调至6.7，用水稀释至1000毫升。

4）苯酚钠溶液（1.35mol/L）：62.5克苯酚溶于少量乙醇，加2毫升甲醇和18.5毫升丙酮，用乙醇稀释至100毫升（A），存于冰箱中；27克NaOH溶于100毫升水（B）。将AB溶液保存在冰箱中。使用前将2溶液各20毫升混合，用蒸馏水稀释至100毫升。

5）次氯酸钠溶液：用水稀释试剂，至活性氯的浓度为0.9%，溶液稳定。

6）氮的标准溶液：a

精确称取0.4717克硫酸铵溶于水并稀释至1000ml，得到1ml含有0.1mg氮的标准液

标准曲线绘制：吸取配置好的氮溶液10ml，定容至100ml，即稀释了10倍，吸取1，3，5，7，9，11，13ml移至50ml容量瓶，加水至20ml，再加入4ml苯酚钠，仔细混合，加入3ml次氯酸钠，充分摇荡，放置20分钟,用水稀释至刻度。将着色液在紫外分光光度计上于578nm处进行比色测定，以标准溶液浓度为横坐标，以光密度值为纵坐标绘制曲线图。

取新鲜土壤7份，每份30g，装于棕色广口瓶中，先将1，3－二氯丙烯溶于丙酮（定量），6份分别加入不同浓度均为1.5ml的1，3－二氯丙烯，使之在土壤中的浓度分别为1、10、50、100、200、500µg/g，另1份相应加入1.5ml的丙酮作为对照，然后调节土壤的含水量至最大田间持水量的60%（记录此时重量，以便补充水分）。放置于25℃恒温培养箱，培养后第0d、1d，5d，10d（前10d密封，后来测定的敞口）、20d，30d，40d，50d分别取土样检测脲酶的活性。取样前，反复旋转广口瓶，混匀土样，一个处理随机取3个重复。

1)

称取5g过1mm筛的风干土样于100ml容量瓶中。

2)

向容量瓶中加入1ml甲苯（以能全部使土样湿润为度）并放置15分钟

3)

之后加入10ml

10％尿素溶液和20ml柠檬酸缓冲液（PH6.7），并

仔细混合

4)

将容量瓶放入37摄氏度恒温箱中，培养24h

5)

培养结束后，用热至38摄氏度水稀释至刻度，仔细摇荡，并将悬液用致密滤纸过滤于三角瓶中。

6)

显色：吸取3ml滤液于50ml容量瓶中，加入10ml蒸馏水，充分震荡，然后加入4ml苯酚钠，仔细混合，再加入3ml次氯酸钠，充分摇荡，放置20分钟，用水稀释至刻度，溶液呈现（青定）酚的蓝色。

7)

1h内在（（青定）酚的蓝色在1h内保持稳定）在分光光度计上用1cm液槽，于578nm处将显色液进行比色测定。

8)

无土对照：不加土样，其他操作与样品实验相同。以检验试剂纯度，整个实验设置一个对照

9)无基质对照：以等体积的水代替基质，其他操作与样品实验相同。每个土样都设此对照。

结果计算：土壤脲酶活性以24小时后100g土壤中NH3－N的毫克数表示。

M＝（X样品－X无土－X无基质）*100*10

式中：M－土壤脲酶活性值

X样品――样品实验的光密度值在标准曲线上对应的NH3－N毫克数

X无土――无土对照实验中的光密度值在标准曲线上对应的NH3－N毫克数

X无基质――无基质对照实验中的光密度值在标准曲线上对应的NH3－N毫克数

100

――样品定容的体积与测定时吸取量的比值

10

――酶活性单位的土重与样品土重之比值

注意事项：当脲酶活性为3-80微克NH3-N时，本法能获得可靠结果。当脲酶活性小于3微克NH3-N，培养时间需增至24小时（已经24h了）（计算时应考虑这一点）

计算：脲酶活

将过 2mm 筛的土壤样品 500g 装入培养钵中，加水至田间持水量的 65% ，于28度下培养1周，加入不同浓度的CdCl2 溶液使土壤镉浓度分别为10\30\ 50\ 100 \200Cd2+mg kg-1，于28 恒温培养箱中培养，各处理均重复3次，每天称重以保持土壤含水量不变，并搅拌土壤 ，保持土壤通气性 分别于培养的1，3，6 ，10 ，15 ，30d 进行取样分析 测定土壤脲酶活性。

分别称取上述不同培养时间的土样 5.00g 加入 1mL 甲苯 15min 后 添加 10mL 不同浓度 0.01 0.025 ，0.05，0.1， 0.2mol L-1尿素溶液和20mLpH6.7 柠檬酸缓冲液37培养，培养结束后滤液中被脲酶水解成的氨氮用靛酚兰比色测定脲酶活性并计算脲酶动力学参数

1g 土样，加2ml水或者磷酸缓冲液（pH=5.0），再加2ml蔗糖溶液（5%，w/v），0.2ml甲苯，将上述溶液混合，30度反应24小时，测还原糖。

其中，磷酸缓冲液的pH,可能需要摸条件，因为不同的缓冲液测出的结果可能有较大差异。

实验过程就是这样，要不你给我个邮箱，我把文献原文发给你。

土壤微生物测定土壤微生物活性表示土壤中整个微生物群落或其中的一些特殊种群状态，可以反映自然或农田生态系统的微小变化。土壤微生物活性的表征量有:微生物量、C/N、土壤呼吸强度和纤维呼吸强度、微生物区系、磷酸酶活性、酶活性等。测定指标：1、土壤微生物量(MierobialBiomass，MB)能代表参与调控土壤能量和养分循环以及有机物质转化相对应微生物的数量，一般指土壤中体积小于5Χ103um3的生物总量。它与土壤有机质含量密切相关。目前，熏蒸法是使用最广泛的一种测定土壤微生物量的方法阎，它是将待测土壤经药剂熏蒸后，土壤中微生物被杀死，被杀死的微生物体被新加人原土样的微生物分解(矿化)而放出CO2，根据释放出的CO2:的量和微生物体矿化率常数Kc可计算出该土样微生物中的碳量。因此碳量的大小就反映了微生物量的大小。此外，还有平板计(通过显微镜直接计数)、成份分析法、底物诱导呼吸法、熏蒸培养法(测定油污染土壤中的微生物量—碳。受土壤水分状况影响较大，不适用强酸性土壤及刚施用过大量有机肥的土壤等)、熏蒸提取法等，均可用来测定土壤微生物量。熏蒸提取-容量分析法操作步骤：（1）土壤前处理和熏蒸（2）提取将熏蒸土壤无损地转移到200mL聚乙烯塑料瓶中，加入100mL0.5mol·L-1K2SO4（图水比为1:4；w：v），振荡30min（300rev·min-1），用中速定量滤纸过滤于125mL塑料瓶中。熏蒸开始的同时，另称取等量的3份土壤于200mL聚乙烯塑料瓶中，直接加入100mlL0.5mol·L-1K2SO4提取；另作3个无土壤空白。提取液应立即分析。（3）测定吸取10mL上述土壤提取液于150mL消化管（24mmх295mm）中，准确加入10mL0.018mol·L-1K2Cr2O7—12mol·L-1H2SO4溶液，加入2~3玻璃珠或瓷片，混匀后置于175±1℃磷酸浴中煮沸10min（放入消化管前，磷酸浴温度应调至179℃，放入后温度恰好为175℃）。冷却后无损地转移至150mL三角瓶中，用去离子水洗涤消化管3~5次使溶液体积约为80mL，加入一滴邻菲罗啉指示剂，用0.05mol·L-1硫酸亚铁标准溶液滴定，溶液颜色由橙黄色变为蓝色，再变为红棕色，即为滴定终点。

（4）结果计算有机碳量（mg·C·kg-1）式中M为FeSO4溶液浓度；V0、V分别为空白和样品消耗的FeSO4溶液的体积（mL），f为稀释倍数；W为烘干土质量（g）；土壤微生物生物量碳：Bc=Ec/kEC式中Ec为熏蒸与未熏蒸土壤的差值；kEC为转换系数，取值0.382、菌种测定土壤微生物种类丰富，主要有细菌、真菌及放线菌等。各菌种在细胞代谢中起着特殊的重要作用。细菌用牛肉汁蛋白陈琼脂培养基平板混菌法培养测定；真菌用马丁氏琼脂培养基平板混菌法培养测定；放线菌用高氏1号琼脂培养基平板混菌法或淀粉按培养基稀释平板法培养测定。3、土壤呼吸强度和纤维分解强度土壤呼吸强度和纤维分解强度是土壤微生物活性的重要标志，反映了土壤中微生物活性及对有机质残体分解的速度和强度。纤维素分解强度采用埋片法；呼吸强度采用碱吸收滴定法。土壤微生物活性用土壤呼吸CO2测定法（5g鲜土于310mL试剂瓶中，22℃24h测CO2释放量(用exH23os红外CO:分析仪测定)）。直接测定土壤呼吸的方法基本可分为静态气室法、动态气室法和微气象法三种。密闭静置培养法原理：CO2+KOHK2CO3+H2OK2CO3+KOHKHCO3+KCl+H2OKHCO3+HClKCl+H2CO3操作步骤：称取20g新鲜土（为了增强呼吸作用，土壤中可加入葡萄糖，6mg·g-1）于500mL的广口瓶中，将土壤加水润湿到最大持水量的70%，用50mL小烧杯，注入20mL0.1M的KOH溶液，然后密闭广口瓶，于28℃恒温培养24h。然后取出，以酚酞为指示剂，用0.1M的HCl溶液滴定。领取同样容积的广口瓶，同上处理，不加土壤作为对照。根据两者之差，求出消耗用于吸收CO2的KOH量。4、酶活性测定土壤酶大多数来自土壤微生物，在土壤中已发现50—60种酶，它们参与并催化土壤中发生的一系列复杂的生物化学反应。如水解酶和转化酶对土壤有机质的形成和养分循环具有重要的作用。已有研究表明，土壤酶活性和土壤结构参数有很好的相关性。土壤微生物酶主要有脱氢酶、磷酸酶、精氨酸酶及芳基硫酸酯酶等。

4.1脱氢酶活性的测定通过测定呼吸链脱氢酶活性可表征微生物代谢活力大小。郑志永等通过对氯化碘硝基四氮哇(INT)比色法反应条件的研究，确定了呼吸链脱氢酶活性的测定方法。4.2过氧化氢酶活性的测定（本部做，需要冰箱）土壤过氧化氢酶采用高锰酸钾容量法，以20min后1g土壤消耗KMnO4(0.11~lmol·L-1)的量表示，或运用注入土壤中的过氧化氢在反应后剩余量的方法测定。操作步骤：称取5g新鲜土壤样品于100mL三角瓶中。加入甲苯0.5mL，摇匀，与0~4℃冰箱中放置半小时。取出，立刻加入25mL冰箱贮存的含3%H2O2的水溶液。充分摇匀后，再放冰箱中半小时。取出，迅速加入2NH2SO44mL，用0.1NKMnO4溶液滴定。根据对照和试样消耗高锰酸钾的差，求出相当于分解的H2O2的量，酶活性以1g土壤、1h内消耗KMnO4的量计算。4．3尿酶活性的测定尿酶采用钠氏比色法，常用1g土，在37℃培养24h后释放出的氨态氮的含量(mg)表示；操作步骤：（1）标准曲线的绘制：分别取0,0.5,1.0,1.5,2.0,2.5mL50ug/mL的氮标准溶液于25mL容量瓶中。用水稀释至10mL，摇匀，加入1mL酒石酸钾钠，0.8mL钠氏剂，摇匀。慢慢加入4mL1MNaOH溶液，稀释至刻度，显色10min后，测定吸光度值。（2）称取5g土壤，置于100mL三角瓶中。加入10mLpH6.7磷酸缓冲溶液及0.5mL甲苯，混合处理15min后，加入10mL10%尿素溶液（对照以水代替），置于37℃恒温箱中，培养48h。（3）培养结束后，取出，加入20mL1MKCl溶液，充分摇匀10min。将悬浊液用滤纸过滤，吸取经过稀释的滤液1mL，按绘制标准曲线的操作，加入酒石酸钾钠，钠氏剂等进行显色，根据标准曲线查出氨氮含量。计算土壤尿酶的活性。4.4蛋白酶活性的测定蛋白酶活性用明胶在磷酸盐缓冲液(pH=7.4)中水解生成甘氨酸的方法测定；

铜盐比色法方法原理：本法以精胶为基质，酶解后所释放出的氨基酸使其与铜盐反应形成蓝色复合物。用比色法测定颜色深度。操作步骤：（1）标准曲线的绘制取0~20mL50ug/mL甘氨酸标准溶液，用蒸馏水加之20mL，然后加入20mL新配制的铜—磷酸盐溶液，显色后于650nm处，测定吸光度。（2）测定操作称取5g土壤置于100mL三角瓶中。加入甲苯2mL，放置15min。计入20mL1%精胶溶液。于37℃恒温箱中，培养24h。与此同时，以水代替基质作为对照。培养结束后，将悬液过滤，取10mL滤液，加水10mL，铜-磷酸盐溶液20mL，显色后，测定吸光度，根据标准曲线法计算NH2-N（甘氨酸？）的含量。5、微生物功能多样性用biolog碳素分析法测定

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土壤微生物测定方法

土壤微生物测定

土壤微生物活性表示土壤中整个微生物群落或其中的一些特殊种群状态，可以反映自然或农田生态系统的微小变化。土壤微生物活性的表征量有:微生物量、C/N、土壤呼吸强度和纤维呼吸强度、微生物区系、磷酸酶活性、酶活性等。

测定指标：

1、土壤微生物量(MierobialBiomass，MB)

能代表参与调控土壤能量和养分循环以及有机物质转化相对应微生物的数量，一般指土壤中体积小于5Χ103um3的生物总量。它与土壤有机质含量密切相关。

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目前，熏蒸法是使用最广泛的一种测定土壤微生物量的方法阎，它是将待测土壤经药剂熏蒸后，土壤中微生物被杀死，被杀死的微生物体被新加人原土样的微生物分解(矿化)而放出CO2，根据释放出的CO2:的量和微生物体矿化率常数Kc可计算出该土样微生物中的碳量。因此碳量的大小就反映了微生物量的大小。

此外，还有平板计(通过显微镜直接计数)、成份分析法、底物诱导呼吸法、熏蒸培养法(测定油污染土壤中的微生物量—碳。受土壤水分状况影响较大，不适用强酸性土壤及刚施用过大量有机肥的土壤等)、熏蒸提取法等，均可用来测定土壤微生物量。

土壤中过氧化氢酶活性的测定 殷晓晨，武亨杰，朱承彬 （中国石油大学 化学化工学院，山东 青岛 266555） 摘要：为了研究土壤中微生物抵御过氧化氢毒害的能力，设计实验， 摘要 采用高锰酸钾滴定法测定受石油污染并接受生物修复的各土壤样品 中过氧化氢酶的活性。研究表明，不同区域的土壤中所含过氧化氢酶 的活性不同， 说明不同区域的土壤受污染程度不同或者恢复速度有所 差异。 关键词： 关键词：土壤；过氧化氢酶；高锰酸钾滴定 中图分类号： 中图分类号：X705 文献标志码： 文献标志码：A Measurement of Catalase Activity in Soil Yin Xiao-chen, Wu Heng-jie, Zhu Cheng-bin （College of Chemistry and Chemical Engineering, China University of Petroleum， Qingdao266555，China） Abstract: This experiment is designed to research the ability of microorganisms to resist the poison of peroxide. The catalase activity in soil which was contaminated by petroleum and then biologically repaired was measured by the method of titration with potassium permanganate. The research shows that the catalase activity in different districts of soil is distinct. Key words: soilcatalasetitration with potassium permanganate 过氧化氢广泛存在于生物体 和土壤中，是由生物呼吸过程和 有机物的生物化学氧化反应的结 果产生的，这些过氧化氢对生物 和土壤具有毒害作用。 与此同时， 在生物体和土壤中存有过氧化氢 氧化氢的量，表示出过氧化氢酶 的活性。本实验重点采用高锰酸 钾滴定法。 1. 实验 1.1 实验器材 本实验所用器材为恒温水浴 锅，冰箱，分析天，用时用 0.1mol/L KmnO4 溶液标定。

1.3 土壤样品

性 以 每 g 干 土 1h 内 消 耗 的 0.1mol/L KmnO4 体积数表示（以 mL 计）表示。

本实验土壤样品取自于受石

2. 结果分析

油污染并接受生物修复的位于东 KMnO4 标定：10mL 0.1mol/L 营市的土壤，共有 14 个土壤样 H2C2O4 用 KMnO4 滴定， 所消耗 KMnO4 品。

1.4 实验方法

体积数为 19.49mL，由此计算出 KMnO4 标 准 溶 液 浓 度 为 0.0205mol/L。 H2O2 标定： 1ml 3% H2O2 用 KMnO4 滴定， 所消耗 KMnO4 体积数 为 16.51ml,由此计算出 H2O2 浓度 为 0.8461mol/L。 酶活性= 空白样剩余过氧化 （ 氢滴定体积-土样剩余过氧化氢 滴定体积）*T/土样质量 其中：酶活性单位- ml(0.1mol/L KMnO4)/(h·g)； T- 高 锰 酸 钾 滴 定 度 的 矫 正 值 T=0.0205/0.02=1.026。 数据处理如下：

分别取 5g 过 1.25mm 筛的风 干土壤样品于具塞三角瓶中（用 不加土样的作空白对照） ，加入 0.5mL 甲苯， 摇匀， 4℃冰箱中 于 放置 30min。 取出， 立刻加入 25mL 冰箱贮存的 3% H2O2 水溶液，充分 混匀后，再置于冰箱中放置 1h。 取出，迅速加入冰箱贮存的 2mol/L H2SO4 溶液 25mL，摇匀， 过滤。取 1mL 滤液于三角瓶，加 入 5mL 蒸馏水和 5mL 2mol/L H2SO4 溶液，用 0.02mol/L 高锰酸钾

溶液滴定。根据对照和样品的滴 定差，求出相当于分解的 H2O2 的 过氧化氢酶活 量所消耗的 KmnO4。

表1

编号 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 土样 北中一 北中一(平行) 南右一 南右一(平行) 左一 左一 (平行) 左二 左三 右一 右二 右三 北左一 北左二 北中二 南左一 北右一 北右三 空白

过氧化氢酶数据处理表

滴定 2 体积数 /ml 0.60 0.58 0.20 0.18 1.40 1.31 1.53 0.10 0.19 1.87 0.09 0.27 3.00 0.30 0.21 0.74 0.20 8.09 平均体 积数/ml 0.585 0.600 0.185 0.195 1.415 1.315 1.490 0.105 0.155 1.750 0.100 0.295 2.950 0.240 0.205 0.740 0.200 8.095

酶活性 （每克干土以 1h 内消耗 0.02mol/LKMnO4 的体积数表 示）

滴定 1 体积数 /ml 0.57 0.62 0.17 0.21 1.43 1.32 1.45 0.11 0.12 1.63 0.11 0.32 2.90 0.18 0.20 0.74 0.20 8.10

1.5413 1.5382 1.6234 1.6213 1.3710 1.3915 1.3556 1.6398 1.6296 1.3022 1.6408 1.6008 1.0559 1.6121 1.6193 1.5095 1.6203 0.0000

1.6 1.4 1.2 1.0 0.8 0.6 0.4 0.2 0.0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18

酶活性

编号

图1

过氧化氢酶活性柱形图

3. 实验讨论

用 0.1mol/L 草酸溶液标定 高锰酸钾溶液时，要先取一定量 的草酸溶液加入一定量硫酸中并 于 70℃水浴加热，开始滴定时快 滴， 快到终点时再进行水浴加热， 后慢滴，待溶液呈微红色且半分 钟内不退色即为终点。 高猛酸钾滴定过程对酸性环 境的要求很严格。经探究后发现 直接取 1mL 滤液滴定不仅液体量 太少，终点不好把握，硫酸的量 也不足，因此我组对实验方法进 行了改进，即取

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1mL 滤液于三角 瓶 ， 加 入 5mL 蒸 馏 水 和 5mL 2mol/L H2SO4 溶液，再用高锰酸 钾溶液滴定，这样滴定过程极为 方便。

[2] 王华芳， 展海军.过氧化氢酶 活性测定方法的研究进展.科技 创新导报，2009: NO.19. [3] 雷柏平等. 过氧化氢酶活 性的比色测定法.临床检验杂志， 1993:11-2. [4] 徐镜波，郎佩珍. 过氧化氢 酶活性及活性抑制的测定.环境 化学，1994.5:13-3. [5] 徐镜波， 袁晓凡， 郎佩珍. 过 氧化氢酶活性及活性抑制的紫外 分光光度测定. 环境化学， 1997:16-1. [6] 鲁赫明等. 农药对土壤过氧 化氢酶活性的影响.东北师范大 学报自然科学版， 2004.12:36-4. [7] 傅丽君,李华亮,钟开新. 杀灭菊酯对土壤过氧化氢酶活性 的影响.生态毒理学报， （4） 2009 : 265-270. [8] 李玉瑛， 冰. 柴油污染土 李 壤生物修复对土壤酶活性的影响.

参考文献：

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生态环境学报 ,2009,18(5): 1753-1756 . [9] 王耀生等. 渗灌对保护地土 壤脲酶和过氧化氢酶活性的影响. 安徽农业科学， 2006， 34(1)： 103 —105望采纳谢谢。

​什么是土壤酶？

土壤是一个活的生态系，这个体系的一切生化过程都是在酶的作用下进行的。土壤酶是指土壤微生物、植物根系和土壤中其他生物细胞产生的胞内酶和胞外酶的总称。

土壤酶从哪里来？

1.  植物根系分泌

植物的根系本身是会分泌土壤酶的，以便更好的吸收营养。

2.  微生物释放分泌

一些微生物是可以分泌酶的，可以促进植物根系更好的发育。

3.  土壤动物区系释放

通过动物区系所释放的土壤酶较少，例如蚯蚓的粪便里就有土壤酶。

4.  动植物残体释放

残枝落叶，以及死亡的动物、微生物都可以释放土壤酶。

土壤酶有哪些？

总的来说土壤酶有6大类

1.     氧化还原酶类

2.     水解酶类

3.     转移酶类

4.     裂解酶类

5.     合成酶类

6.     异构酶类

一般目前研究最多的是前4种酶类，而土壤中的氧化还原酶类和水解酶类是存在最为广泛的两种酶类。

土壤酶有什么作用？

1.  土壤酶参与各种代谢过程和能量转化

土壤酶是土壤的组成成分之一。土壤中土壤酶的活性反映了土壤中进行的各种生物化学过程的动向和强度，虽然数量少，但是作用非常强大。

2.  土壤酶是评判土壤肥力的重要指标

土壤质量核心是土壤生产力，其基础是土壤肥力，土壤酶的活力高低是评判土壤肥力的重要指标。它反映了土壤中养分的转化能力以及土壤中生物活性的大小，它参与土壤中各种代谢过程和能量转化，是土壤生物化学特征的重要组成部分，是评价土壤肥力的一项重要指标。

3.  加速土壤中有机质的转化

土壤酶可以促进土壤中腐殖质和有机无机胶体的形成，这样可以更多的形成团粒结构，并且还可以将大分子的物质形成植物可以吸收利用的最小单位。比如脲酶能促进土壤中的含氮有机化合物——脲素分子的酰胺肽键的水解，生成的氨是植物氮素营养来源之一；磷酸酶能促进有机磷化合物的分解，为植物提供有效的磷素；铁、锰还原酶能酶促土壤中铁、锰的转化以便利于植物吸收。

4.  解毒

我们都知道作物在连作过程中会积累一定的自毒物质，土壤酶可以分解这些对植物根系和土壤微生态环境有害的物质；另一方面，过氧化氢酶还可以分解在土壤中所有生物呼吸过程中所生成的过氧化氢，减轻过氧化氢对植物的危害。

5.  帮助作物更好的吸收养分

土壤酶可以将矿质元素从土壤胶体中争夺出来，变成可溶性的、具有移动性的养分供植物吸收利用。

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都是土壤学的研究内容，土壤养分研究n、p、k（氮、磷、钾）等养分的运移、吸收、转运过程，服务于农业生产。而土壤酶活性则研究微生物的功能强弱，这些微生物多会参与营养元素的周转、转化过程。

人身中有一种酶叫胃酶。它是由人的腺细胞分泌的，当我们吃的食物进入到胃中时，胃酶就出来消化这些食物，胃中的胃酶分泌较少，吃进的食物不能得到充分消化的话，也就是我们所说的消化不良，这时要吃一些酵母片来帮助胃酶一起消化这些美味佳肴。人体有酶，土壤中也有酶。

土壤酶和人体中的酶一样，也是一种活性很强的蛋白质类化合物，主要来自于土壤微生物的生命活动，高等植物根系也分泌出少数的酶，土壤中的动植物残体也带人某些酶类。由活的生物体分泌到土壤中的酶叫外酶；生物体死亡，细胞崩溃释放出来的酶叫内酶。至今已知土壤中有40种酶，它们或者被土壤颗粒以及土壤中的其他物质所吸附，或者自由自在地存在于土壤中。土壤中常见的酶有四大类：①氧化还原酶类，包括脱羧酶、接触酶、过氧化物酶和多酚氧化酶等；②转移酶类：包括转氨酶、转甙酶等；③水解酶类：包括的种类最多，主要有磷酸脂酶、多磷酸酶、淀粉酶和尿酶等；④脱羧酶类等。土壤中微生物所引起的生物化学过程，即有机残余物质的分解、腐殖质的合成和某些无机化合物的转化，全是借助于它们所产生的酶来实现的。因此，土壤中酶的活性，可作为判断土壤生物化学过程强度、鉴别土壤类型、评价土壤肥力水平及鉴定农业技术措施的有效程度。