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胶原纤维的胶原蛋白的染色

激情的海燕
迷路的香菇
2022-12-22 23:39:36

胶原纤维的胶原蛋白的染色

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碧蓝的草丛
冷艳的小丸子
2026-04-23 09:23:09

胶原纤维在HE染色法被染成粉红色,除此之外,它还可以用一些阴离子的染料来进行染色,如用淡绿可把它们染为绿色,用甲苯胺蓝可将其染为蓝色,在网状纤维染色中,如不加以处理,它又可被染为棕黄色。常用的特殊染色法有Van Gieson.Masson和Mallary等方法。在免疫细胞化学染色中,胶原纤维由于含的负电荷过多,常导致某些非特异性的染色,应特别注意。

(一).Van Gieson(V.G)染色法

I. 试剂的配制:

weigert氏苏木素

A液: 苏木素 1g (haematoxylin)

无水酒精 100ml

B液: 30%三氯化铁 4ml (ferric chloride)

蒸馏水 95ml

盐酸 1ml

II.Van Gieson氏液

A液: 酸性品红 1g(acid fuchsin)

蒸馏水  100ml

B液: 苦味酸饱和水溶液,(1.22%)(picric acid)

注意事项:

1、Weigert氏苏木素临用前取A液和B液等份混合,几个小时内用完,最长不得超过一天。

2、苏木素配后经二十多天才能成熟,必须提前配制。

3、该液能抵抗弱酸性染液,对已着染的细胞核在酸性染液的作用,不易被脱去颜色,如果不特别深染,则无须分化。

4、Van Gieson氏液取B液9ml,加入A液1ml,即可使用。

操作方法:(后面的各种方法,如没特别说明,都在室温下进行)

1、切片脱蜡至水,

2、用Weigert氏苏木素染20min,

3、水洗,必要时可分化,

4、流水冲洗10min,

5、染Van Gieson氏液1min,

6、用95%酒精快速分化,

7、无水酒精脱水,二甲苯透明,封固。

结果:

胶原纤维:鲜红色,肌纤维: 黄色,红细胞: 黄色,细胞核: 蓝黑或灰色。

注意事项:

1、该法染完的切片,较易褪色如需照相,应尽早完成。

2、苏木素染液如为棕色或沉淀,应将其抛弃。

3、分化用的酒精,应使用95%以上的酒精,低浓度的酒精褪色能力强,容易将着染的红色脱去。

4、切片也可以用天青兰苏木素替代Weigert氏苏木素,染核效果基本一样。

(二).Masson氏三色染色法:天青石蓝液的配制:天青石蓝(Celestin blue B) 1.25g 硫酸铁铵(ferric ammonium sulfate)1.25g

蒸馏水 200ml

甘油(glycerin) 30ml

将前两者溶于蒸馏水中,然后煮沸,冷却后过滤,再加入甘油和麝香草酚。

Mayer氏苏木素的配制苏木素 0.1g 蒸馏水 100ml

钾明矾(Potassium alum) 5g

柠檬酸(Citric acid) 0.1g

水合氯醛(Chloral hydrate)20mg

配制法:

将苏木素放入蒸馏水中,用玻棒不停地搅拌直至完全溶解,再依次加入钾明矾,柠檬酸和水合氯醛,再继续搅拌,最后加入碘酸钠,搅拌均匀,即可使用。

丽春红酸性品红液的配制: 丽春红(ponceau 2R) 0.7g

酸性品红(acid fuchsin)0.3g

冰醋酸 1ml

蒸馏水 99ml

操作方法: 1

、切片脱蜡至水, 2、1%高锰酸钾氧化切片5min,

3、水洗,草酸漂白1min,

4、水洗,蒸馏水洗,天青石蓝染5min水洗,

5、摔去余液不用水洗,滴染Mayer氏苏木素3-5min,

6、流水冲洗5-10min,

7、丽春红苦味酸饱和液染5min,

8、1%醋酸水溶液洗,

9、1%磷钼酸分化切片约5min,

10、蒸馏水洗,

11、1%淡绿或者甲苯胺蓝滴染30s,

12、1%醋酸水溶液洗切片,

13、95%酒精分化,无水酒精脱水,

14、二甲苯透明,中性树胶封固。

结果: 胶原纤维呈现绿色或蓝色,细胞核呈现灰黑或灰蓝色,肌肉和胞质红细胞呈现红色。

注意事项:①Masson氏染液配完后保存时间不宜过长,如有可能,每次染色以染配为佳,如何可使着色颜色的鲜艳性。②切片在各级酒精中脱水,时间不宜过长,否则会将着染的颜色脱去。③切片保存所着染的颜色显长为1—2年以后会随着时间的延长而逐渐褪去,应予注意。④磷钼酸和磷钨酸在染色法中的作用各有不同,磷钼酸作用于胶原纤维,磷钨酸作用于纤维胶]质,肌胶质,神经胶质和上皮纤维等。上述两种试剂的使用,可以促进组织有选择的染色,它们可以减少背景和核的染色,使背景清晰。⑤ 如有可能,在组织固定时,用Zenker氏固定液固定,如此对染色效果将更好。

临床应用: 1

、与淀粉样物的区别: 胶原纤维发生病变如坏死或透明变性时,它与淀粉样物在HE染色时被染为粉红色,不好区别。应用V.G染色法,能将胶原纤维染为粉红色,而淀粉样物将被染为黄色。 2、应用与间胚叶来源肿瘤的区别:

如纤维瘤(肉瘤),平滑肌、横纹肌瘤(肉瘤),神经纤维瘤(肉瘤)、恶性纤维组织细胞瘤等,由于都含有大量的纤维,HE染色均为红色。应用Masson氏染色法,可将胶原纤维染色蓝色或绿色,肌源性组织被染为红色。

3、应用与其他慢性炎症的区别。

如慢性阑尾炎,疤痕愈合时,纤维愈复病灶可被染为鲜红色或蓝绿色,SARS病患者愈合后有的肺部可出现疤痕,粘连,此时可显示蓝色或绿色。

可用于鉴定肝硬化及创伤组织的修复程度。肝硬化时的肝组织有许多不同大小的假小叶,用上述方法显示时,可显示出不同的组织结构。V.G法可将包绕假小叶的胶原纤维染成红色,胆汗呈绿色。

小结

胶原纤维在上述的两种方法中着染不同的颜色,如V.G着染红色,Masson氏着染蓝色或绿色。这主要取决于染料对组织的渗透、吸附、沉淀和反应,而染料分子量的大小是关键,分子量小的分子移动迅速,行动快,对组织的渗透性较强,能穿透较为致密的组织。分子量大的染料分子移动较迟缓,渗透力较弱,可作用于组织强求构较疏松的组织,染色时间可适当延长。

在相关的染料中,分子量从小到大依次排列是:苦味酸(黄色):229.11;桔黄G(黄色):452;丽春红(红色):480.42;酸性品红(红色):585.53;苯胺蓝(蓝色):737.72;亮绿(绿色):792.72;甲基蓝(蓝色)>99。

染色是一个较为复杂的化学反应和物理作用的双重过程,在应用这些方法时,根据不同情况,选择不同的方法,认真地操作,方能获得最佳的效果。

最新回答
美丽的犀牛
舒适的雪糕
2026-04-23 09:23:09

肝硬化切片,一个细胞大约多大?

制作时将部分有病变的组织或脏器经过各种化学品和埋藏法的处理,使之固定硬化,在切片机上切成薄片,粘附在玻片上,染以各种颜色,供在显微镜下检查,以观察病理变化,作出病理诊断,为临床诊断和治疗提供帮助。

制作

1.取材

(1)材料新鲜:取材组织愈新鲜愈好,人体组织一般在离体后,动物组织在处死后迅速固定,以保证原有的形态学结构。

(2)组织块的大小:所取组织块较理想的体积为2.0cm×2.0cm×0.3cm,以使固定液能迅速而均匀地渗入组织内部,但根据制片材料和目的不同,组织块的较理想体积也不同,如制作病理外检、科研切片,其组织块可以薄取0.1~0.2cm即可,这样可以缩短固定脱水透明的时间,若制作教学切片厚取0.3~0.5cm,这样可以同一蜡块制作出较多的教学切片。

(3)勿挤压组织块:切取组织块用的刀剪要锋利,切割时不可来回锉动。夹取组织时切勿过紧,以免因挤压而使组织、细胞变形。

(4)规范取材部位:要准确地按解剖部位取材,病理标本取材按照各病变部位、性质的不同,根据要求规范化取材。

(5)选好组织块的切面:根据各器官的组织结构,决定其切面的走向。纵切或横切往往是显示组织形态结构的关键,如长管状器官以横切为好。

(6)保持材料的清洁:组织块上如有血液、污物、黏液、食物、粪便等,可用水冲洗干净后再放入固定液中。

(7)保持组织的原有形态:新鲜组织固定后,或多或少会产生收缩现象,有时甚至完全变形。为此可将组织展平,以尽可能维持原形。

2.固定

(1)小块组织固定法:这是最常用的方法,从人体或动物体取下的小块组织,须立即置入液态固定剂中进行固定,通常,标本与固定液的比例为1:4~20,但组织块不宜过大过厚,否则固定液不能迅速渗透。故取组织块的大小一般为2.0cm×2.0cm×0.3cm。

(2)注射、灌注固定法:某些组织块由于体积过大或固定液极难渗入内部,或需要对整个脏器或整个动物体进行固定。这时宜采用注射固定或灌注固定法。将固定液注入血管,经血管分支到达整个组织和全身,从而得到充分的固定。

(3)蒸汽固定法:比较小而厚的标本,可采用锇酸或甲醛蒸汽固定法。如血液涂片,则应在血片未干燥前采用锇酸或甲醛蒸汽接触固定。

最常用的固定液有10%甲醛固定液和95%乙醇固定液。

3.脱水透明

标本经过固定和冲洗后,组织中含有较多的水分,必须将组织块内的水分置换出来,这一过程叫作脱水。无论是用石蜡切片,还是用火棉胶切片,都必须除去组织中所含水分,因含水组织与石蜡、火棉胶等包埋材料不相容,常用的脱水剂为一系列不同浓度的乙醇。

脱水的步骤是:80%、90%、95%、100%各种浓度乙醇2小时,此过程可用脱水机自控完成。

丙酮也是一种脱水能力很强的脱水剂,但因其脱水能力很强,对组织有剧烈收缩作用,在制作科研、教学切片时一般不用该试剂。因乙醇、丙酮等不溶于石蜡,还要经过一个能溶于石蜡的溶剂替代过程称为透明。常用的透明剂有二甲苯、三氯甲烷、水杨酸甲酯等。

4.浸蜡、包埋

(1)使石蜡浸入组织中,取代组织中含有的透明剂。

(2)包埋:将浸蜡后的组织置于融化的固体石蜡中,石蜡凝固后,组织即被包在其中,称蜡块,此过程称为包埋。

5.切片和贴片

(1)修整蜡块:可视其组织的大小,在组织边缘约0.1~0.2cm处,切去余蜡部分,否则易造成组织皱缩不平。

(2)准备好切片用具:切片刀、毛笔、眼科镊子(弯)、漂烘温控仪

(3)安装蜡块:将修好的蜡块安装在金属或木制持蜡器上。

(4)安装切片刀:将切片刀安装在切片机的刀台上,把刀台上的紧固螺丝旋紧,使切片时不产生振动,能保持一定的切片厚度。

(5)切片的厚度:切片机的厚度调节器上刻有0~50μm或0~25μm,可任意选择其厚度,石蜡切片的厚度一般在4~6μm。

(6)切片

(7)铺片:用眼科镊子镊起蜡带轻轻平铺在40~45℃的水面上,借水的张力和水的温度,将略皱的蜡带自然展平。

(8)贴片、烘片:待切片在恒温水面上充分展平后,将蜡片捞到载玻片的中段处倾去载玻片上的余水,置入60~65℃恒温箱内或切片漂烘温控仪的烘箱内烤片15~30分钟,脱去溶化组织间隙的石蜡。

6.染色和封片

常用的染色方法是苏木素-伊红(Hematoxylin-Eosin)染色法,简称H.E染色法。这种方法对任何固定液固定的组织和应用各种包埋法的切片均可使用。苏木素是一种碱性染料,可使组织中的嗜碱性物质染成蓝色,如细胞核中的染色质等;伊红是一种酸性染料,可使组织中的嗜酸性物质染成红色,如多数细胞的胞质、核仁等在H.E染色的切片中均呈红色。