概念与方法
1.土壤元素有效量
土壤元素有效量一般针对植物营养和有益元素而言。按照植物营养与肥料学的观点，土壤中植物营养与有益元素的有效量是指土壤中呈相对活动状态，能被植物直接吸收利用的那部分元素的含量，是土壤元素总量组成的一部分。在科学研究和生产实践中，通常以水、盐、弱酸弱碱、络合剂等作为提取剂（液），遵照规定的提取操作流程得到元素分量，即操作意义上呈相对活动态的元素含量。浙江省农业地质环境调查项目微量营养元素Fe、Mn、Cu、Zn、B、Mo和生命必需元素Se的有效量浸提与测试方法参见表4-3。
2.土壤元素可浸提量
土壤元素可浸提量是针对土壤中有毒有害重金属、类金属及非金属元素而言。是指土壤中活动性较强，易于溶出或淋滤进入水体，或易于被动植物吸收利用的那部分元素含量。与土壤元素有效量类似，通常以水、盐、弱酸弱碱、络合剂等作为提取剂（液），遵照一定的提取操作流程获得操作意义上相对活动态组分。浙江省农业地质环境调查项目Cd、Hg、Pb、As浸提量的提取与测定方法参见表4-3。为简便起见，笔者将有毒有害重金属可浸提量一并称之为有效量。
3.土壤元素形态组成
土壤中有毒有害重金属元素存在形态（相态）不同，不同形态存在的元素的生态环境效应不同。按照一定的顺序提取方案，通过实验手段可以获得操作意义上土壤中呈各种形态（相态）存在的元素含量。
Tessier（1979）提出了沉积物中元素形态的多步顺序提取方案，以此为基础发展形成了土壤重金属形态提取的多种方案，其中四态法、七态法最具代表性。土壤元素7种形态包括：以水为提取剂提取的水溶态；以氯化镁为提取剂提取的离子交换态；以醋酸-醋酸钠为提取剂提取的碳酸盐结合态；以焦磷酸钠为提取剂提取的弱有机（腐殖酸）结合态；以盐酸羟胺为提取剂提取的铁锰结合态；以过氧化氢为提取剂提取的强有机结合态；以氢氟酸提取的残渣态。考虑到水提取态元素含量较低，现有检测限难于满足要求的现实，将水溶态合并入离子交换态，将土壤元素分为六态处理。
形态顺序提取得到的水溶态、离子交换态是土壤中活动性最强的元素存在形态。而以碳酸盐结合态、有机结合态、铁锰结合态等形态存在的元素，当土壤环境条件改变时，如氧化、酸化等作用下，能够从一种形态转化为相对活动或相对稳定的另一种形态。因此，土壤元素形态分析是土壤元素生态环境效应评价与预测的基础依据。
4.土壤元素有效度
土壤元素有效度是衡量土壤元素相对活动性及生物有效性高低的重要参数。有效度是指营养有益元素有效量与其总量的比值，即土壤中活动性较强、易于被生物吸收累积或迁移进入水体生态链的元素含量占元素总量的比例。为方便起见，将土壤中有毒有害元素可浸提量与总量的比值，也称之为有效度。
一，分光光度法测定阿司匹林肠溶片的含量
目的: 建立分光光度法阿司匹林含量的测定方法。方法: 在碱性条件下, 乙酰水杨酸与羟胺反应生成羟肟酸在酸性溶液中, 后者与三氯化铁形成红色的羟肟酸铁, 一定浓度范围内, 吸光度呈线性关系。结果: 在520nm 波长下, 采用标准曲线法, 测得阿司匹林肠溶片中乙酰水杨酸的含量为25mg/ 片。结论: 方法操作简便、快速、准确可用于阿司匹林含量的测定和产品质量控制。
阿司匹林( C9H8O4, 180.16) 又名: 2-(乙酰氧基) 苯甲酸,或乙酰水杨酸, 是常用的解热镇痛药, 临床上多用于治疗心脑血管方面的疾病, 也可用于消化道肿瘤和老年性痴呆症的预防。
阿司匹林药片中乙酰水杨酸的含量测定, 大多采用酸碱滴定法测定和高效液相色谱法分析测定。本方法采用可见分光光度法测定阿司匹药片中乙酰水杨酸的含量, 操作简便、快速、准确, 实验成本低, 可用于阿司匹林药品的分析和产品质量控制。
1.仪器和材料
仪器: 722 型分光光度计( 上海) , 容量瓶( 25mL) , 吸量管( 5mL , 1mL) 。材料: 2mo l/L NaOH , 4mol/L H Cl, 10%FeCl3 , 7%盐酸羟胺乙醇液0. 5 g / L乙酰水杨酸标准溶液阿司匹林样品溶液( 阿司匹林肠溶片, 配制成20 片/L 乙醇液) 。
2 方法和结果
阿司匹林肠溶片的主要成分为乙酰水杨酸,分子中酯基在碱性溶液中可与羟胺反应生成羟肟酸后者在酸性条件下与三氯化铁形成酒红色的羟肟酸铁,最大吸收波长为520nm,在一定浓度范围内,吸光度呈线性关系,可测出阿司匹林药片中乙酰水杨酸的含量。
2•1 标准溶液系列和样品溶液的配制
分别取0.5g•L-1乙酰水杨酸标准溶液0.00mL(空白溶液),0.50mL,1.00mL,1.50mL,2.00mL和阿司匹林样品溶液1.00mL置于25mL容量瓶中,分别加入7%盐酸羟胺乙醇液1.00mL,2 mol•L-1NaOH 1.00mL,放置3分钟,再分别加入4 mol•L-1HCl和10%FeCl3各1.00mL,加水至刻度,摇匀。
2•2 标准曲线的绘制
标准溶液系列和样品溶液放置10分钟后,用空白溶液做对照,在520nm处测定吸光度。以吸光度为纵坐标,标准溶液浓度为横坐标作图,绘制出标准曲线表1。
二，阿司匹林制剂的电极法测定
摘要 以三苄基锡辛酸酯为活性物质, 制备具有良好的电位响应性能和选择性能的PVC 膜水杨酸根离子敏感电极。该电极应用于阿司匹林制剂的含量测定, 方法快速、方便、准确。标准曲线与样品加入两种电极测定法回收率分别为101. 1%和101. 3%。
1 仪器与试剂
电极电位和溶液酸度测试均使用pHs-10C 型数字式酸度离子计( 浙江萧山市科学仪器厂) 参比电极为232 型饱和甘汞电极( 上海光电器件厂) 邻硝基苯基辛醚系本实验室自制, 其余试剂均为分析纯, 实验用水为去离子水经高锰酸钾处理后蒸馏而得。
2 电极制备与性能测试
将载体物质三苄基锡辛酸酯( 按文献方法合成) 20 mg 、聚氯乙烯( PVC) 0. 33 g 和增塑剂邻硝基苯基辛醚0. 65 g 溶解于四氢呋喃( THF) 3 g 中, 搅拌澄清后将其倾倒于40 mm×40 mm 的水平玻璃板上。待THF挥发完后( 约需12 h) 即得到具有弹性的PVC 膜。用打孔器切下直径10 mm 的圆片并用含5%PVC 的THF 溶液粘于PVC 电极杆端, 放置数小时, 晾干后电极杆内充以0. 1mo l/ L 的水杨酸钠( NaSal) 溶液作为内参比溶液并以Ag/ AgCl 丝作为内参比电极导出至离子计。电极使用前需于10- 3 mol/ LNaSal 溶液中浸泡2 h 进行活化处理。电极及备用膜长期不使用时可洗净后, 置于氮气氛围下保存。在此条件保存, 电极的各项性能指标至少可于5 个月内维持稳定。在pH5. 5 的磷酸盐缓冲溶液中测试了电极的电位响应性能。结果表明, 该电极对于10-1～5×10-6 mo l/ L 浓度范围内的水杨酸根离子具有线性响应, 斜率值为- 57.6 mV,表现出良好的稳定性与重视性。电极具有较快的电位响应: 对于各种浓度的待测样品, 其稳态响应时间( t95%) 均小于30 s, 可以实现水杨酸根离子的快速测定。采用等活度分别溶液法测试了了电极的选择性能, 得到其相对于NO3- 、Cl-、AcO-和SO2-4 的选择性系数值分别为7.5×10-5、2.1×10-5、9. 0×10-4和<10-5。该电极表现出对水杨酸根离子的高选择性。
3 阿司匹林制剂的分析
3. 1 待测样品的处理
阿司匹林易水解得到水杨酸根离子, 且反应定量。因此, 通过对水杨酸根离子的测定即可得出样品中的阿司匹林含量。阿司匹林片( A) 和复方阿司匹林片( B) 均处理如下: 将适量药品( 10 片) 研制成粉状, 精密称取1～1. 5 g , 在0. 5 mol/ L NaOH 溶液25 ml 中加热回流1 h 后过滤, 定容至250 ml。吸取10ml 滤液, 用稀硫酸调至pH 5. 5, 再用pH 5. 5的磷酸盐缓冲液定容至100 ml 作为待测液。
3. 2 测定结果
使用该电极通过标准溶液法和样品加入法, 分别测定药品A 和B 经前述处理后所得试样中的水杨酸根离子浓度, 通过换算得出药剂中阿司匹林的含量, 所得结果见表1。表1 中的参照值系对样品采用药典推荐方法进行测定得到的结果( 3 次测定平均值) 。
三 酸碱滴定法
（1）直接滴定法
原理；阿司匹林与氢氧化钠反应生成乙酰水杨酸钠和水
pKa3～6都有游离羧基，显酸性。
• 方法：取本品0。4g，精密称定，加中性乙醇20ml，溶解，加酚酞指示液3d，用氢氧化钠滴定液（0.1mol/l）滴定。每1ml滴定液相当于18.02mg 的C9H8O4。
• 优点：简便、快速。
• 缺点：酯键水解干扰（不断搅拌、快速滴定）。
• 酸性杂质干扰（如水杨酸 ）。
• 适用范围：不能用于含水杨酸过高或制剂分析，只能用于合格原料药的含量测定。
中性乙醇：取乙醇加入2滴酚酞指示液，用稀氢氧化钠溶液滴至溶液刚好呈粉红色，即可。PH值为8左右
（2）水解后剩余滴定
• 原理；利用阿司匹林酯结构在碱性溶液中易于水解的特性，加入过量的氢氧化钠滴定液。加热使酯键水解，剩余的氢氧化钠滴定液用硫酸滴定液回定
• 方法：取本品1.5g，精密称定加氢氧化钠滴（0.5mol/l）50.0ml，混合，缓缓煮沸10min，放冷，加酚酞指示液，用硫酸滴定液（0.25mol/l）滴定剩余的氢氧化钠。
• 由反应式得知，硫酸标准液与阿司匹林的摩尔比为1∶1
•
• 优点：消除了酯键水解的干扰
• 缺点：酸性杂质干扰
四，高效液相色谱法
• 【仪器与试药】仪器：高效液相色谱仪；CLASS—LC工作站。色谱柱：ODS C18色谱柱(150mm x 4．6mm，填料：Kromasil，粒度：5um)。
• 试药: 阿司匹林对照品，甲醇(色谱纯试剂)，冰醋酸、盐酸(分析纯试剂)。
【方法】取本品20片，精密称定，研细，精密称取适量(约相当于阿司匹林10mg)，置100m1量瓶中，加0．1mol/l盐酸溶液适量，超声使阿司匹林溶解，放冷至室温，加0．1mol/l盐酸溶液稀释至刻度，摇匀，滤过，精密量取续滤液5m1，置25m1量瓶中，加0．1mol/l盐酸溶液稀释至刻度，格匀，取20ul注入液相色谱仪，记录色谱图。另取阿司匹林对照品适量，加0．1mol/l盐酸溶液溶解并稀释制成每l m1中约含阿司林20ul的溶液，取20ul同法测定。按外标法以峰面积计算，即得。
关键：TFA、甲醇的浓度、体积，蒸发次数当多糖含有糖醛酸时,由于中性糖和酸性糖对酸水解的耐受不同,与糖醛酸连接的单糖很难被酸水解。糖醛酸的定量可使用比色分析法或寻找需要其他的分析方法如GC-MS。含糖醛酸的多糖用氘代硼化钠还原后,再进行酸水解、衍生化,经GC-MS可以很好地定性糖醛酸类型。测定衍生GC方法1：（山药多糖的 GC-MS 分析）乙酰化衍生物：（1）取水解的单糖 3mg（2）加入 1mL 的吡啶，1mL 的乙酸酐，加热两个小时。（3）后减压抽干（4）加入氯仿，溶解用蒸馏水洗涤，分三次萃取，取氯仿层，加压抽干，得棕黄色产物，（5）此乙酰化的单糖醇用氯仿稀释后进行 GC-MS 分析。GC-MS 操作条件：DB-5MS 柱（30m×0.25mm×0.25µm）柱温采用程序升温开始温度为 120℃，以 10℃/min 速率升温至 170℃；再以 15℃/min 升温至 280℃；最后在 280℃维持 40 分钟。MS 条件：M/Z：50～550，电子流量 70ev，EI源。[1]姜军. 山药多糖的分离纯化及其化学结构的初步研究[D].扬州大学,2007.方法2：(亚麻籽壳多糖的提取)（1）加入10 mg盐酸羟胺0.5 mL吡啶,摇匀于90 °C条件下水浴反应30 min（2）加入1.O mL乙酸酐,90 °C水浴30 mm进行乙酰化反应（3）氮吹去除溶剂,加入1.0 mL肌醇六乙酸醋内标溶液,进行GC分析。标准单糖的衍生化分别称取鼠李糖、木糖、岩藻糖、半乳糖、甘露糖、阿拉伯糖和葡萄糖标准品10 mg,加入10 mg盐酸羟胺,1 mL吡啶摇匀,90 °C水浴30 min,加1 mL乙酸酐,90°C水浴30 min进行乙酰化,氮气吹干溶剂,加入1 mL肌醇六乙酸酯内标溶液,进行GC分析。气相色谱分析条件HP 7890, FED 检测器,色谱柱为 HP-INNOWAX 柱(30 mxO.25 mmxO.25 um),恒流模式,流速为2 mL/min,程序升温条件为:180 °C保持1 min,从180 °C开始以5 °C/min升温至210 ℃,保持lOmin,再以1 °C/min升温至230℃,保持5 min。进样口采用分流模式,分流比为10:1,进样口温度为270 ℃。检测器温度为270℃,检测器H2流速为30 mL/min,空气流速为300 mL/min,尾吹为25 mL/min。进样量为1 uL。
[1]毛丰玮. 亚麻籽壳多糖的提取、分离纯化与结构研究[D].浙江工商大学,2013.方法3：甲基化-气相色谱质谱联用分析（1）羧基还原10 mg多糖溶于7 mL水中,加入CMC 330 mg,磁力搅拌下滴加0.01 mol/L HCl,使pH保持为4.75,维持2h。逐滴滴加2mol/LNaBD4溶液(10mL),此时pH值急剧上升,需用4 mol/LHCL控制pH为7.00,持续搅拌,NaBD4溶液在45 min内加完,在室温下继续反应Ih。反应完毕后,滴加冰乙酸至pH4.0以消耗多余的NaBD4,反应液蒸溜水透析24 h,流水透析24 h,透析袋内液浓缩后,冷冻干燥。(2)甲基化反应(1)无水二甲基亚砜的制备二甲基亚砜中加入4A分子筛,置于干燥皿中保存。(2)NaOH干燥粉末的制备在取适量的块状NaOH,置于红外灯下碾磨至粉状,现磨现用。(3)甲基化反应瓶先通入干燥氮气15 min左右驱赶瓶中空气,在氮气流中快速加入P2O5千燥后的羧基还原多糖和5 ml无水二甲亚砜(DMSO,以4 A分子筛脱水),磁力搅拌至糖样充分溶解后再搅拌1h。迅速加入碾磨好的NaOH干燥粉末,盖上瓶盖,反应2h。将反应瓶置于冰水浴中,用注射器加入碘甲烷1 mL,继续反应2 h,整个反应过程在氮气压下进行,尽量保证反应在无水无氧条件下进行。将反应后溶液加入等体积氯仿,充分振荡,萃取甲基化多糖,重复至少三次,合并萃取液。再用蒸德水反复洗萃取液至少三次,减压浓缩后于P205千燥瓶中千燥。以红外光谱3600-3300 cm"'处有无轻基吸收峰作为判别甲基化是否完全的标准。（3）甲基化多糖水解、还原和乙酰化甲基化多糖需要先以甲酸水解再用三氟乙酸水解。加入90%甲酸1 mL于装有样品的安瓿管中,充氮封管,在100°C下水解6h,水解完毕后,以氮吹除去甲酸,加入甲醇1ml,氮吹去除,以完全去除甲酸,加甲醇重复三次。加入NaBD4 70 mg还原24h,室温磁力搅拌,除去NaBD4,再加入lmL2mol/L三氟乙酸,充氮封管,在120 °C下水解3h。水解完毕后,以氮吹完全除去三氟乙酸,加入甲醇1ml,氮吹去除,以完全去除甲酸,加甲醇重复三次。
甲基化单糖经乙丑化,水解后,用气相色谱-质谱分析。（4）气相色谱一质谱分析仪器型号:TRACE GC ULTRA DSQ II(thermo)色谱柱:TR-35MS (30 mxO.25mmxO.25 um):恒流流速(高纯氦气):1.0 mL/min,柱温程序升温:80度保留3 min,以15 °C/min升至200 °C保留1 min,再以10 °C/min升至260。C ,保留5 min。接口温度 250℃， EI+源:70 eV,250 °C ,扫描频率 5 次/s,质量范围:33-500 amu。[1]毛丰玮. 亚麻籽壳多糖的提取、分离纯化与结构研究[D].浙江工商大学,2013.方法4：（党参果聚糖）高碘酸钠氧化10 mg 样品溶于 10 mL 0.015mol·L-1高碘酸钠中, 避光置于 4 ℃处 ,间隔不同时间取样稀释250 倍后用分光光度法测定高碘酸钠的消耗量及用 0.005 mol·L-1NaOH 滴定甲酸的释放量。上述氧化完全的多糖溶液加入 0.2 mL 乙二醇 ,充分混合后对蒸馏水进行透析 24 h, 用 8 mg NaBH4于室温还原12 h,用 0.1 mol·L-1醋酸调至 pH 4～ 5,再对水透析 24 h, 减压抽干, 用 1 mol·L-1三氟醋酸封管 100 ℃水解 12 h ,减压抽干 ,乙酰化后进行气相色谱 。[1]叶冠,李晨,黄成钢,李志孝,王新亮,陈耀祖. 党参果聚糖的化学结构[J]. 中国中药杂志,2005,17:1338-1340.HPLC方法1：（阿魏侧耳子实体多糖）高效液相色谱:色谱条件为:色谱柱为 Shodex KS804 Sugar(300mm ×7.8mm), 柱温 40 度流动相为水, 流速0.8mL·min-1。 检测用 410R Ⅰ 示差检测 器, 数 据处理用810GPC 软件进行。 同时用鼠李糖、阿拉伯糖、甘露糖、半乳糖、木糖、果糖、葡萄糖、岩藻糖 8 种单糖进行对照, 根据峰值确定样品的单糖组成。
[1]李军. 阿魏侧耳子实体多糖分离纯化及其化学结构的初步研究[D].华中农业大学,2004.方法2：（白术多糖）分子量及纯度检测根据文献和中华人民共和国药典2000版附录的方法，分别将分离组分和各种标准多糖用重蒸馏水配制成溶液，用HPLC-ELSD进行检测。色谱条件:色谱柱为ShodexKS 804 Sugar (300 mm x 7.8 mm)，柱温40℃流动相为水，流速0.8 ml/min。检测条件:飘移管温度为120度，气流速度3.4 L/min,灵敏度为26。单糖组成的测定色谱条件:色谱柱为Kromasil NH2 ( 250 mm x 4 . 6 mm , 5 u ) ,柱温30度流动相为乙腈一水(72:28)，流速:0.8 ml/min。检测器条件:飘移管温度为110度气流速度1.9 L/min灵敏度为26。[1]池玉梅,李伟,文红梅,崔小兵,蔡皓,毕肖林. 白术多糖的分离纯化和化学结构研究[J]. 中药材,2001,09:647-648.
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三氟乙酸水解
水解
方法1（毛头鬼伞菌丝体粗提物的制备）
（1）取2mg多糖样品放入薄壁长试管中,加入2mol/L三氟乙酸(TFA)4mL,在110℃下水解
（2）多糖样品水解2h后,取试管内溶液减压蒸干(低于40℃)
（3）然后加入3mL甲醇蒸干,重复以上操作4一5次,以完全除去TFA。
（4）用超纯水溶解定容至100mL容量瓶,稀释100倍后上样测定。
[1]凡军民. 毛头鬼伞菌丝体多糖的分离、纯化和化学结构鉴定及生物活性研究[D].南京农业大学,2006.
