苯酚品红在哪个实验出现

卡诺氏固定液(Carnoy's Fluid or carnoys

fixative）适用于一般植物组织和细胞的固定,常用于根尖,花药压片及子房石蜡切片等.有极快的渗透力。

根尖材料固定15—20min即可。

花药则需1h左右,此液固定最多不超过24h。

染色后多用于观察植物根尖细胞分裂状态。

改良苯酚品红，又称卡宝染色液（Carbol fuchsin），又称改良石炭酸品红，

此液适于动植物各种大小的染色体、体细胞染色体和减数分裂染色体，并具有相当牢固的染色性能，保存性好，室温下两年不变质。

本品与卡诺氏液作用相似。

望采纳~~

染成红色。

苯酚品红染色液与醋酸洋红有相似之处，生物学上也常用作观察细胞分裂时染色体形态的染色剂。染色体染色时用醋酸洋红染色液染色, 虽然染色效果较好, 但却存在着染色需时较长的问题。

改良苯酚品红染液常用于植物组织的压片法和涂片法，染液稳定。改良苯酚品红染液采用改良配方，加入衬染剂，使染色效果更佳。主要用于染色体染色如体细胞染色体和减数分裂染色，是很好的细胞核、线粒体染色剂。

扩展资料：

改良苯酚品红染液的制作：

原液A：取3克碱性品红溶于100毫升70%酒精中，此液可以长期保存。

原液B：取A液10毫升加入90毫升5%苯酚水溶液中（2周内使用）。

原液C：取B液55毫升加入6毫升的冰醋酸和6毫升38%的甲醛。

染色液：取C液10-20毫升，加入90-80毫升45%醋酸和1.5克山梨醇。放置2周后使用，染色效果显著，可普遍用于植物组织的压片法和涂片法，使用2-3年不变质。

参考资料来源：百度百科-苯酚品红染液

大蒜（2n=16）.之所以选用大蒜而非洋葱是因为在做观察有丝分裂实验时发现大蒜的效果比洋葱好.

实验步骤

1、洋葱长出约1cm左右的不定根时,放入冰箱的低温室内（4℃）,诱导培养36h.

2、剪取诱导处理的根尖约0.1cm,放入卡诺氏液（3份95%酒精与1份冰醋酸混合均匀）中浸泡0.1 小时,以固定细胞的形态,然后用体积分数为95%的酒精冲洗2次.

3、制作装片：解离→漂洗→染色→制片（过程同观察细胞的有丝分裂的制片方法一样）

4、观察：用显微镜观察,并寻找发生了染色体数目变化的细胞.（视野中既有正常的二倍体细胞,也有染色体数目发生改变的细胞.）

知识拓展

1、固定是借助于物理方法或化学药物的作用,迅速渗入组织和细胞将之杀死,使其形态结构和内含物尽可能保持生活时的完整和真实状态.

2、细胞中的染色体数目加倍,可以是增加一倍（变为32）,也可能是增加四倍（变为64）.

3、视野中大量细胞为有丝分裂间期的细胞,其特点为核膜、核仁明显,核质呈均匀状态.移动载玻片,先低倍镜后高倍镜,可观察到有丝分裂各个时期的细胞,尤其是中期的细胞,染色体的形态和数目清晰可见.

4、改良苯酚品红溶液和醋酸洋红溶液都可以使染色体着色

实验中几种溶液的作用

（1）卡诺氏液：固定细胞的形态.

（2）改良苯酚品红染液：细胞核染色,便于观察染色体的行为.

（3)15%的盐酸溶液：解离,使细胞分离开.

（4)95%的酒精溶液：洗去附着在根尖的卡诺氏液,在细胞的分离程度上起一定的作用.(参考资料：

题中染料和以上染料都可以染色，高中阶段不要求具体区分，但一般大体说碱性染料或直接答龙胆紫

不用太计较

1.

斐林试剂：

成分：0.1g/ml NaOH(甲液)和0.05g/ml CuSO4(乙液)。

用法：将斐林试剂甲液和乙液混合，再将混合后的斐林试剂倒入待测液，水浴加热，如待测液中存在还原糖，则呈砖红色。

2.班氏糖定性试剂：

为蓝色溶液。和葡萄糖混合后沸水浴会出现砖红色沉淀。用于尿糖的测定。

3.双缩脲试剂：成分：0.1g/ml NaOH(甲液)和0.01g/ml CuSO4(乙液)。用法：向待测液中先加入2ml甲液，摇匀，再向其中加入3~4滴乙液，摇匀。如待测中存在蛋白质，则呈现紫色。

4.苏丹Ⅲ：用法：取苏丹Ⅲ颗粒溶于95%的酒精中，摇匀。用于检测脂肪。可将脂肪染成橘黄色

(被苏丹Ⅳ染成红色)。

5.二苯胺：用于鉴定DNA。DNA遇二苯胺(沸水浴)会被染成蓝色。

6.甲基绿：用于鉴定DNA。DNA遇甲基绿(常温)会被染成蓝绿色。

吡罗红：检测RNA，呈红色

7、50%的酒精溶液：用于洗去苏丹Ⅲ在脂肪上的浮色。

8、70%的酒精溶液：用于医学临床上的消毒灭菌。

9、95%的酒精溶液：冷却的体积分数为95%的酒精可用于凝集DNA

10、15%的盐酸：和95%的酒精溶液等体积混合可用于解离根尖。

11.龙胆紫溶液或醋酸洋红：碱性染料，用于染色体染色时，前者呈深蓝色，后者呈红色

改良苯酚品红染液：检测染色体，红色

健那绿：检测线粒体，专一性让线粒体染色呈蓝绿色

12.20%的肝脏、3%的过氧化氢、3.5%的氯化铁：用于比较过氧化氢酶和Fe3+的催化效率。（新鲜的肝脏中含有过氧化氢酶）

13、3%的可溶性淀粉溶液、3%的蔗糖溶液、2%的新鲜淀粉酶溶液：用于探索淀粉酶对淀粉和蔗糖的作用实验。

14.碘液：用于鉴定淀粉的存在。遇淀粉变蓝。遇糖原变红

15.丙酮：用于提取叶绿体中的色素

16.层析液：(成分：20份石油醚、2份丙酮、和1份苯混合而成，也可用93号汽油)

可用于色素的层析，即将色素在滤纸上分离开。

17.二氧化硅：在色素的提取的分离实验中研磨绿色叶片时加入，可使研磨充分。

18.碳酸钙：研磨绿色叶片时加入，可中和有机酸，防止在研磨时叶绿体中的色素受破坏。

19、0.3g/mL的蔗糖溶液：相当于30%的蔗糖溶液，比植物细胞液的浓度大，可用于质壁分离实验。

20、0.1g/mL的柠檬酸钠溶液：与鸡血混合，防凝血

21、氯化钠溶液：①可用于溶解DNA。当氯化钠浓度为2mol/L、0.015mol/L时DNA的溶解度最高，在氯化钠浓度为0.14 mol/L时，DNA溶解度最低。②浓度为0.9%时可作为生理盐水。

22、胰蛋白酶：①可用来分解蛋白质。②可用于动物细胞培养时分解组织使组织细胞分散于。

23、秋水仙素：人工诱导多倍体试剂。用于萌发的种子或幼苗，可使染色体组加倍，原理是可抑制正在分裂的细胞纺缍体的形成。

24、氯化钙：增强细菌细胞壁的通透性，可用于基因工程。

25．石磊试剂：检验溶液酸碱性→判断光合速率与呼吸速率快慢的关系；

26、NaHCO3/ Na2CO3 Na2HPO4/ NaH2PO4：酸碱缓冲对→调节PH

27．NaCl：配制生理盐水（0.9%）或用于提取DNA（0.14M或2M)

28．溴麝香草酚蓝水溶液：检测CO2，由蓝变绿再变黄

2、固定：卡诺氏固定液12-24小时，然后70%的酒精中4℃冰箱保存。

3、解离：从固定液中取出根尖，用蒸馏水洗3次，每次5min，然后用1M盐酸（或0.5%果胶酶+纤维素酶）60℃解离8-10min，再用蒸馏水洗一次。

4、染色：切取乳白色的分生区组织滴一滴石炭酸品红（或醋酸洋红）染色液，染15min。

5、压片，防止气泡产生。

6、镜检。

7、永久封片，利用指甲油、中性树胶等制作永久封片。

准备材料：洋葱、培养皿、蒸馏水、广口瓶、滤纸、纱布、烧杯、镊子、剪刀、显微镜、载玻片、盖玻片、卡诺氏液、改良苯酚品红染液、体积分数为15%的盐酸溶液、体积分数为95%的酒精溶液。 

一、培养根尖。将洋葱放入装满蒸馏水的广口瓶中，洋葱底部接触水

二、低温诱导。放入冰箱，将整个装置放入冰箱的低温室（4℃）内，诱导培养36小时

三、固定细胞形态。剪去诱导处理的根尖约0.5-1cm，放入卡诺氏液中浸泡0.5-1小时，以固定细胞的形态

四、用体积分数为15%的盐酸溶液、体积分数为95%的酒精溶液冲洗2次

五、将处理好的根尖放在玻片上

六、滴改良苯酚品红染液，着色3-5分钟

七、制片完成后，将玻片放入显微镜下观察

八、在显微镜下可以观察到，染色体数目加倍，低温可以诱导植物细胞中的染色体数目加倍

进行正常有丝分裂的植物分生组织细胞，在有丝分裂后 期，染色体的着丝点分裂，子染色体在纺锤丝的作用下，分别移向两极，最终被平均分配到两个子细胞中去。 用低温处理植物分生组织细胞，能够抑制纺锤体的形成，以致影响染色体被拉向两极，使细胞也不能分裂成两个子细胞。结果，植物细胞染色体数目发生变化。

二、实验材料

洋葱（之所以选用大蒜而非洋葱是因为在做观察有丝分裂实验时发现大蒜的效果比洋葱好），培养皿、滤纸、纱布、烧杯、镊子、剪刀、显微镜，载玻片、盖玻片、冰箱，卡诺氏液，改良苯酚品红染液，体积分数为15%的盐酸溶液，体积分数为95%的酒精溶液。

三、实验步骤

1、洋葱长出约1cm左右的不定根时，放入冰箱的低温室内（4℃），诱导培养36h。

2、剪取诱导处理的根尖约0.5～1cm，放入卡诺氏液（3份95%酒精与1份冰醋酸混合均匀）中浸泡0.5～1 小时，以固定细胞的形态，然后用体积分数为95%的酒精冲洗2次。

3、制作装片：解离→漂洗→染色→制片（过程同观察细胞的有丝分裂的制片方法一样）

4、观察：用显微镜观察，并寻找发生了染色体数目变化的细胞。（视野中既有正常的二倍体细胞，也有染色体数目发生改变的细胞。）

四、实验中几种试剂的作用

1、卡诺氏液：固定细胞形态。

2、95%酒精：冲洗附着在根尖表面的卡诺氏液。

3、解离液：(质量分数为15%HCI和体积分数为95%酒精1:1混合)使组织中的细胞分离开 4、清水：洗去解离液，防止解离过度，便于染色。

5、改良苯酚品红染液：使染色体着色。

五、注意事项（看不到染色体数加倍且无仿锤体的细胞原因）

1、没有培养出分生区或没有剪取到分生区。

2、低温诱导时间不足 。

3、解离不充分或漂洗不干净造成染色不足。

4、染色时间控制不当，看不清染色体。

5、没有低倍镜寻找过程。