0.2%的蒽酮-硫酸如何配置
0.2%的蒽酮-硫酸如何配置过程:计算所需浓硫酸的体积、用量筒量取浓硫酸 、溶解、恢复至室温、转移、洗涤、振荡、定容、摇匀、装液。溶解0.2g菌酮于浓硫酸(AR95.5%)100ml中,当日配制试用。具体实验过程中,应视样品分数多少来准备菌酮试剂的配器量。
蒽酮-浓硫酸溶液颜色蒽酮比色法中用到0.2%的蒽酮-浓硫酸溶液。现配现用,将浓硫酸倒入放有蒽酮的锥形瓶以后,一开始是黄色,有些许的晶体没溶解得完,放一会儿之后,会变成深黄色(有点褐色了)。
扩展资料:
葱酮试剂。比如实样品有50份,为了保证结果的可靠性,安排个份样品试金重复数为3。因为每个试验点实测需要4ml菌酮试剂,所以至少应配置的体积为4×3×50=600ml。此时还应考虑预实验和实验差错所消耗葱酮试剂量。
分别取0.1g/1的葡萄糖溶液0.05,0.10,0.20,0.30,040,0.60,0.80ml,用蒸馏水补到1.00ml,分另别加入4.00ml 菌酮试剂,迅速进入冰水浴中冷却,各管加完后一起浸入沸水浴中,管口加盖玻璃求,以防蒸发。
参考资料来源:百度百科-蒽酮比色法
苯酚法测定可溶性糖原理:植物体内的可溶性糖主要是指能溶于水及乙醇的单糖和寡聚糖。苯酚法测定可溶性糖的原理是:糖在浓硫酸作用下,脱水生成的糠醛或羟甲基糠醛(分子式见蒽酮法)能与苯酚缩合成一种橙红色化合物,在10~100mg范围内其颜色深浅与糖的含量成正比,且在485nm波长下有最大吸收峰,故可用比色法在此波长下测定。苯酚法可用于甲基化的糖、戊糖和多聚糖的测定,方法简单,试剂便宜,灵敏度高,实验时基本不受蛋白质存在的影响,并且产生的颜色可稳定160min以上。
二、材料、仪器设备及试剂
(一)材料:新鲜的植物叶片。
(二)仪器设备:1. 分光光度计;2. 水浴锅;3. 刻度试管;4. 刻度吸管。
(三)试剂:1. 90%苯酚溶液 称取90克苯酚(AR),加蒸馏水10ml溶解,在室温下可保存数月;2. 9%苯酚溶液 取3ml90%苯酚溶液,加蒸馏水至30ml,现配现用;3. 浓硫酸(比重1.84);4. 1%蔗糖标准液 将分析纯蔗糖在80℃下烘至恒重,精确称取1.000克。加少量水溶解,转入100ml容量瓶中,加入0.5ml浓硫酸,用蒸馏水定容至刻度;5. 100μg/L 蔗糖标准液 精确吸取1%蔗糖标准液1ml加入100ml容量瓶中,加水至刻度。
三、实验步骤
1. 标准曲线的制:向试管内加入1ml9%苯酚溶液,摇匀,再从管液正面以5~20S加入5ml浓硫酸,摇匀。比色液总体积为8ml,在室温下放置30min,比色。然后以空白为参比,在485nm波长下比色,以糖含量为横坐标,吸光度为纵坐标,绘制标准曲线,求出标准直线方程。
2. 可溶性糖的提取取:取新鲜植物叶片,擦净表面污物,剪碎混匀,称取0.10~0.30g,共3份(或干材料),分别放入3支刻度试管中,加入5~10ml蒸馏水,塑料薄膜封口,于沸水中提取30min(提取2次),提取液过滤入25ml容量瓶中,反复漂洗试管及残渣,定容至刻度。
3. 测定 吸取0.5ml样品液于试管中(重复2次),加蒸馏水1.5ml,同制作标准曲线的步骤,按顺序分别加入苯酚、浓硫酸溶液,显色并测定吸光度。由标准曲线查出糖的量。
四、结果计算
按下式计算测试样品的糖含量:
可溶性糖含量(%)=从标准曲线查得糖的量(μg)×提取液体积(ml)×稀释倍数/[测定用样品液的体积(ml)×样品重量(g)×106]×100
鲜切花不是医药品或食品,因此国家没有标准。
这两个方法差不多,哪个方便或者误差小就用哪个。
再有就是苯酚硫酸法中使用的苯酚必须重蒸,这个挺不好弄的,也有点危险,所以自己看着办。
(一)苯酚法测定可溶性糖
【实验原理】
植物体内的可溶性糖主要是指能溶于水及乙醇的单糖和寡聚糖。苯酚法测定可溶性糖的原理是:糖在浓硫酸作用下,脱水生成的糠醛或羟甲基糠醛能与苯酚缩合成一种橙红色化合物,在10-100mg范围内其颜色深浅与糖的含量成正比,且在485nm波长下有最大吸收峰,故可用比色法在此波长下测定。苯酚法可用于甲基化的糖、戊糖和多聚糖的测定,方法简单,灵敏度高,实验时基本不受蛋白质存在的影响,并且产生的颜色稳定160min以上。
【实验仪器及试剂】
1.仪器:分光光度计、电炉、铝锅、20mL刻度试管、刻度吸管、记号笔、吸水纸适量。
2.试剂:
(1)90%苯酚溶液:称取90g苯酚(AR),加蒸馏水10mL溶解,在室温下可保存数月。
(2)9%苯酚溶液:取3mL 90%苯酚溶液,加蒸馏水至30mL,现配现用。
(3)浓硫酸(比重1.84)。
(4)1%蔗糖标准液:将分析纯蔗糖在80℃下烘至恒重,精确称取1.000g。加少量水溶解,移入100mL容量瓶中,加入0.5mL浓硫酸,用蒸馏水定容至刻度。
(5)100ug/L蔗糖标准液:精确吸取1%蔗糖标准液1mL加入100mL容量瓶中,加水定容。
【实验步骤】
1.标准曲线的制作: 取20mL刻度试管11支,从0-10分别编号,按表27-1加入溶液和水,然后按顺序向试管内加入1mL 9%苯酚溶液,摇匀,再从管液正面以 5-20s。加入5 mL浓硫酸,摇匀。比色液总体积为8 mL,在恒温下放置30min。显色。然后以空白为参比,在485nm波长下比色测定,以糖含量为横坐标,光密度为纵坐标,绘制标准曲线,求出标准直线方程。
2.可溶性糖的提取 取新鲜植物叶片,擦净表面污物,剪碎混匀,称取0.10-0.30g,共3份,分别放入3支刻度试管中,加入5-10mL 蒸馏水,塑料薄膜封口,于沸水中提取30min(提取2次),提取液过滤入25mL容量瓶中,反复冲洗试管及残渣,定容至刻度。
3.测定吸取0.5mL样品液于试管中(重复2次),加蒸馏水1.5mL,同制作标准曲线的步骤,按顺序分别加入苯酚、浓硫酸溶液,显色并测定光密度。由标准线性方程求出糖的量,按下式计算测试样品中糖含量。
式中:C一标准方程求得糖量(ug)
α一吸取样品液体积(mL)
V-提取液量(mL)
n一稀释倍数
W一组织重量(g)
(二) 蒽酮法测定可溶性糖
【实验原理】
糖在浓硫酸作用下,可经脱水反应生成糠醛或羟甲基糠醛,生成的糠醛或羟甲基糠醛可与蒽酮反应生成蓝绿色糠醛衍生物,在一定范围内,颜色的深浅与糖的含量成正比,故可用于糖的定量。
该法的特点是几乎可以测定所有的碳水化合物,不但可以测定戊糖与己糖,而且可以测所有寡糖类和多糖类,其中包括淀粉、纤维素等(因为反应液中的浓硫酸可以把多糖水解成单糖而发生反应X 所以用愈酮法测出的碳水化合物含量,实际上是溶液中全部可溶性碳水化合物总量。在没有必要细致划分各种碳水化合物的情况下,用意酮法可以一次测出总量,省去许多麻烦,因此,有特殊的应用价值。但在测定水溶性碳水化合物时,则应注意切勿将样品的未溶解残渣加入反应液中,不然会因为细胞壁中的纤维素、半纤维素等与意酮试剂发生反应而增加了测定误差。此外,不同的糖类与蒽酮试剂的显色深度不同,果糖显色最深,葡萄糖次之,半乳糖、甘露糖较浅,五碳糖显色更浅,故测定糖的混合物时,常因不同糖类的比例不同造成误差,但测定单一糖类时,则可避免此种误差。
糖类与蒽酮反应生成的有色物质在可见光区的吸收峰为630nm,故在此波长下进行比色。
【实验仪器及试剂】
1.仪器:分光光度计、电炉、铝锅、20ml刻度试管、刻度吸管、记号笔、吸水纸适量。
2.试剂:
(1)蒽酮乙酸乙酯试剂:取分析纯蒽酮1g,溶于50mL乙酸乙酯中,贮于棕色瓶中,在黑暗中可保存数周,如有结晶析出,可微热溶解。
(2)浓硫酸(比重1.84)
【实验步骤】
1.标准曲线的制作:按方法一标准曲线的制作方法加入标准的蔗糖溶液,然后按顺序向试管中加入0.5mL蒽酮乙酸乙酯试剂和5mL浓硫酸,充分振荡,立即将试管放入沸水浴中,逐管准确保温1min取出后自然冷却至室温,以空白作参比,在630nm波长下测其光密度,以光密度为纵坐标,以糖含量为横坐标,绘制标准曲线,并求出标准线性方程。
2.可溶性糖的提取同方法一第二步。
3.显色测定:吸取样品提取液0.5mL于20mL刻度试管中(重复2次),加蒸馏水1.5mL,以下步骤与标准曲线测定相同,测定样品的光密度。
4.计算可溶性糖的含量,计算公式同方法一。
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